| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-16页 |
| ·白菜概述 | 第9-10页 |
| ·白菜的植物学性状及品种分类 | 第9页 |
| ·白菜生产中面临的问题 | 第9页 |
| ·白菜基因工程研究概况 | 第9-10页 |
| ·植物原位转化研究 | 第10-14页 |
| ·原位转化机理 | 第10-11页 |
| ·植物原位转化方法 | 第11-14页 |
| ·种子浸蘸法 | 第11页 |
| ·花粉管通道法 | 第11-12页 |
| ·真空渗入法 | 第12页 |
| ·浸花法 | 第12-13页 |
| ·其他非组培方法 | 第13-14页 |
| ·原位转化研究进展及发展前景 | 第14页 |
| ·研究目的及意义 | 第14-15页 |
| ·技术路线 | 第15-16页 |
| 第二章 农杆菌介导的白菜浸花法转化 | 第16-23页 |
| ·材料和方法 | 第16-18页 |
| ·材料 | 第16页 |
| ·植物材料 | 第16页 |
| ·载体与菌种 | 第16页 |
| ·试剂及溶液配制 | 第16页 |
| ·实验方法 | 第16-18页 |
| ·结球白菜的浸花实验 | 第16-18页 |
| ·不结球白菜的浸花实验 | 第18页 |
| ·结果与分析 | 第18-22页 |
| ·结球白菜的浸花处理 | 第18-21页 |
| ·结籽情况调查 | 第18页 |
| ·Basta 抗性筛选 | 第18-19页 |
| ·抗性苗的氯酚红检测 | 第19-20页 |
| ·抗性苗的 GUS 基因表达检测 | 第20页 |
| ·抗性苗的分子鉴定 | 第20-21页 |
| ·不结球白菜的浸花处理 | 第21-22页 |
| ·结论 | 第22-23页 |
| 第三章 不结球白菜与拟南芥的浸花转化比较 | 第23-31页 |
| ·实验材料和方法 | 第23-25页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·植物材料 | 第23页 |
| ·工程菌 | 第23页 |
| ·试剂 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-25页 |
| ·花蕾的形态观察 | 第23页 |
| ·拟南芥与白菜在花序及单花发育上的时间进程及形态学比较 | 第23-25页 |
| ·浸花处理 | 第25页 |
| ·转基因 T1代种子的抗性筛选 | 第25页 |
| ·GUS 基因的活性检测 | 第25页 |
| ·处理植株花蕾中农杆菌的培养 | 第25页 |
| ·花蕾提取液中农杆菌的特征分析 | 第25页 |
| ·结果与分析 | 第25-30页 |
| ·拟南芥与白菜在花序及单花发育上的时间进程及形态学比较结果 | 第25-28页 |
| ·花蕾解剖结构观察 | 第25-26页 |
| ·花序调查结果 | 第26-28页 |
| ·T1种子抗性筛选结果 | 第28页 |
| ·GUS 外源基因表达的检测 | 第28页 |
| ·拟南芥和白菜花器官中农杆菌数的定量分析 | 第28-30页 |
| ·花蕾提取液中培养菌落的验证 | 第28-29页 |
| ·拟南芥和不结球白菜引心 360 花器官中农杆菌数量差异比较 | 第29-30页 |
| ·结论 | 第30-31页 |
| 第四章 讨论 | 第31-33页 |
| ·花的结构对转化的影响 | 第31页 |
| ·浸花法中农杆菌进入植物体内可能的途径与生存方式 | 第31-32页 |
| ·依花蕾更新速度调整浸花时间间隔有助于实现转化 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-39页 |
| 致谢 | 第39页 |
