| 摘 要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第9-29页 |
| ·目的与意义 | 第9-10页 |
| ·国内外研究动态 | 第10-29页 |
| ·侧根发生的研究进展 | 第10-15页 |
| ·侧根的发生过程 | 第10-13页 |
| ·侧根发生的激素调控 | 第13-14页 |
| ·无侧根突变体RM109的研究进展 | 第14-15页 |
| ·蛋白质组学研究进展 | 第15-29页 |
| ·蛋白质组学的概念 | 第15-16页 |
| ·蛋白质混合物的分离技术 | 第16-20页 |
| ·蛋白质组技术的支柱-鉴定技术 | 第20-22页 |
| ·蛋白质组数据库(Database)与高流通量筛选(HTS) | 第22-23页 |
| ·蛋白质组分析的应用 | 第23-24页 |
| ·蛋白质组学在植物领域中的应用 | 第24-27页 |
| ·蛋白质组学面临的困难与展望 | 第27-29页 |
| 2 材料与方法 | 第29-37页 |
| ·蛋白质组学方法的建立 | 第29-34页 |
| ·实验材料 | 第29页 |
| ·实验仪器 | 第29页 |
| ·实验试剂 | 第29-30页 |
| ·试剂 | 第29页 |
| ·主要试剂配制 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-34页 |
| ·材料的培养 | 第30页 |
| ·样品的提取 | 第30页 |
| ·蛋白质浓度的定量 | 第30页 |
| ·第一向等电聚焦 | 第30-32页 |
| ·平衡IPG胶条 | 第32页 |
| ·第二向SDS-PAGE | 第32页 |
| ·凝胶图象分析 | 第32-33页 |
| ·差异蛋白点的肽质量指纹分析蛋白质胶内消化 | 第33页 |
| ·差异蛋白的肽质量指纹谱(PMF)分析 | 第33-34页 |
| ·数据检索 | 第34页 |
| ·无侧根突变体的蛋白质组学研究 | 第34-37页 |
| ·实验材料 | 第34页 |
| ·实验方法 | 第34-37页 |
| ·材料的培养 | 第34页 |
| ·样品的提取 | 第34页 |
| ·蛋白质浓度的定量 | 第34页 |
| ·第一向等电聚焦 | 第34-35页 |
| ·平衡IPG胶条 | 第35页 |
| ·第二向SDS-PAGE. | 第35-36页 |
| ·凝胶图象分析 | 第36页 |
| ·差异蛋白点的肽质量指纹分析蛋白质胶内消化 | 第36页 |
| ·差异蛋白的肽质量指纹谱(PMF)分析 | 第36页 |
| ·数据检索 | 第36-37页 |
| 3 结果与分析 | 第37-42页 |
| ·双向电泳的影响因素 | 第37页 |
| ·蛋白质提取方法对双向电泳的影响 | 第37页 |
| ·等电聚焦上样量对双向电泳的影响 | 第37页 |
| ·再水化时间对双向电泳的影响 | 第37页 |
| ·无侧根突变体的蛋白质组学研究结果分析 | 第37-42页 |
| ·RM109与大力不同部位双向电泳凝胶图象分析结果 | 第37-40页 |
| ·RM109与大力不同部位差异蛋白点的质谱鉴定结果 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-46页 |
| ·蛋白质组学方法的建立 | 第42-43页 |
| ·双向电泳方法方法的建立 | 第42-43页 |
| ·样品制备 | 第42页 |
| ·上样量的选择 | 第42页 |
| ·染色方法的选择 | 第42-43页 |
| ·双向电泳凝胶图谱的分析 | 第43页 |
| ·图象调整 | 第43页 |
| ·校正与标准化 | 第43页 |
| ·自动化 | 第43页 |
| ·无侧根突变体蛋白质组学研究结果 | 第43-45页 |
| ·差异蛋白点在不同器官的分布特点 | 第43-44页 |
| ·差异蛋白点与突变体生长发育的关系 | 第44-45页 |
| ·展望 | 第45-46页 |
| 5 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-57页 |
| 图版 | 第57-59页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
