| 英文缩略词表 | 第1-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 引言 | 第8-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14页 |
| 1.转基因技术在生物育种中的研究进展 | 第14-24页 |
| ·转基因技术发展现状 | 第14-16页 |
| ·转基因技术在植物中的发展现状 | 第14-15页 |
| ·转基因技术在动物中的发展现状 | 第15-16页 |
| ·转基因技术在植物育种中的应用 | 第16-18页 |
| ·抗虫性 | 第16-17页 |
| ·抗病性 | 第17页 |
| ·抗逆性 | 第17-18页 |
| ·抗除草剂 | 第18页 |
| ·植物转基因常用转化方法 | 第18-20页 |
| ·基因枪法 | 第18-19页 |
| ·农杆菌介导法 | 第19-20页 |
| ·花粉管通道法 | 第20页 |
| ·植物转基因技术中存在的问题及解决办法 | 第20-24页 |
| ·转化系统对转基因技术的限制 | 第21-22页 |
| ·基因沉默 | 第22-23页 |
| ·转基因生物产品的安全性问题 | 第23-24页 |
| 2.紫花苜蓿遗传转化研究进展 | 第24-26页 |
| ·紫花苜蓿转化受体系统的建立 | 第24-25页 |
| ·原生质体受体系统 | 第24页 |
| ·愈伤诱导分化再生受体系统 | 第24-25页 |
| ·胚状体分化受体系统 | 第25页 |
| ·紫花苜蓿常用转化方法 | 第25-26页 |
| 3.溶菌酶-绿色荧光蛋白（Lyz-GFP）研究进展 | 第26-29页 |
| ·溶菌酶研究进展 | 第26-27页 |
| ·溶菌酶及其性质 | 第26页 |
| ·溶菌酶分类 | 第26页 |
| ·影响溶菌酶活性的因素 | 第26-27页 |
| ·溶菌酶的应用 | 第27页 |
| ·绿色荧光蛋白研究进展 | 第27-29页 |
| ·绿色荧光蛋白及其性质 | 第27页 |
| ·绿色荧光蛋白的特点 | 第27-28页 |
| ·绿色荧光蛋白的应用 | 第28-29页 |
| 4.原位转化法研究进展 | 第29-30页 |
| 5.研究目的与意义 | 第30-31页 |
| 第二章 农杆菌介导的 Lyz-GFP 双元基因通过组织培养在陇东苜蓿中的转化. | 第31页 |
| 1.材料及方法 | 第31-33页 |
| ·试验材料 | 第31-32页 |
| ·材料 | 第31页 |
| ·抗生素及植物激素 | 第31页 |
| ·各类培养基及成分 | 第31-32页 |
| ·试验方法 | 第32-33页 |
| ·外植体获得 | 第32页 |
| ·农杆菌介导的 Lyz-GFP 双元基因的活化 | 第32页 |
| ·农杆菌介导的组织培养转化体系的建立 | 第32-33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-36页 |
| ·菌液浓度对转化效率的影响 | 第33页 |
| ·陇东苜蓿对卡纳霉素敏感性的测定 | 第33-34页 |
| ·陇东苜蓿愈伤组织抑菌效果的测定 | 第34-35页 |
| ·造成转化苗玻璃化现象的因素分析 | 第35-36页 |
| ·6 -BA 和 NAA 浓度对陇东苜蓿再生苗玻璃化的影响 | 第35页 |
| ·蔗糖浓度对陇东苜蓿再生苗玻璃化的影响 | 第35-36页 |
| ·琼脂浓度对陇东苜蓿再生苗玻璃化的影响 | 第36页 |
| ·光照强度对陇东苜蓿再生苗玻璃化的影响 | 第36页 |
| 3 讨论 | 第36-38页 |
| ·农杆菌介导基因转化体系中适宜条件的确立 | 第37页 |
| ·再生过程中玻璃化现象的研究 | 第37-38页 |
| 4.结论 | 第38-39页 |
| 第三章 农杆菌介导漩涡振荡侵染法对陇东苜蓿茎尖生长点转化的研究 | 第39页 |
| 1 材料和方法 | 第39-42页 |
| ·材料 | 第39-40页 |
| ·试验材料 | 第39页 |
| ·抗生素及植物激素 | 第39页 |
| ·各类培养基及成分 | 第39-40页 |
| ·试验方法 | 第40-42页 |
| ·外植体选择 | 第40页 |
| ·农杆菌介导的 Lyz-GFP 双元基因的活化 | 第40页 |
| ·农杆菌介导漩涡振荡侵染法遗传体系的建立 | 第40-41页 |
| ·陇东苜蓿转化苗生长及其诱导生根 | 第41页 |
| ·陇东苜蓿转化苗的移栽 | 第41-42页 |
| ·数据统计 | 第42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-46页 |
| ·卡那霉素对陇东苜蓿植株生长的影响 | 第42-43页 |
| ·转化植株头孢霉素抑菌浓度的确定 | 第43页 |
| ·漩涡振荡时间对植株转化和再生的影响 | 第43-44页 |
| ·不同培养阶段卡那霉素浓度对转化植株再生的影响 | 第44-45页 |
| ·不同激素浓度对陇东苜蓿生根的影响 | 第45页 |
| ·不同体积配比基质对陇东苜蓿试管苗移栽的影响 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| ·农杆菌介导的茎尖生长点遗传转化新技术体系的建立和优越性 | 第46-47页 |
| ·农杆菌介导的旋窝振荡法转化中适宜条件的确立 | 第47页 |
| 4 结论 | 第47-48页 |
| 第四章 陇东苜蓿转化植株荧光检测及其 PCR 检测 | 第48页 |
| 1 材料和方法 | 第48-52页 |
| ·材料 | 第48-49页 |
| ·试验材料 | 第48页 |
| ·菌种活化培养基配制 | 第48页 |
| ·生化试剂配制 | 第48页 |
| ·农杆菌质粒 DNA 提取试剂 | 第48页 |
| ·植物基因组 DNA 提取试剂 | 第48页 |
| ·检测仪器及试剂 | 第48-49页 |
| ·试验方法 | 第49-52页 |
| ·陇东苜蓿转化植株叶片荧光检测 | 第49页 |
| ·菌种活化 | 第49页 |
| ·LBA4404 质粒 DNA 提起 | 第49-50页 |
| ·陇东苜蓿转化植株叶片 DNA 的提取 | 第50页 |
| ·PCR 扩增 | 第50-52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-53页 |
| ·陇东苜蓿转化植株荧光检测及其分析 | 第52页 |
| ·PCR 检测及其分析 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-54页 |
| ·绿色荧光蛋白表达对转基因植株检测的影响 | 第53页 |
| ·PCR 检测方法的应用及存在问题 | 第53-54页 |
| 4 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-64页 |
| 附图 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 作者简介 | 第66-67页 |
| 导师简介 | 第67-68页 |
