| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 目录 | 第9-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-24页 |
| 第一节 鳗鲡的研究概况 | 第13-15页 |
| 1 鳗鲡的分类地位和资源现状 | 第13-14页 |
| ·鳗鲡的分类地位 | 第13页 |
| ·鳗鲡的资源现状 | 第13-14页 |
| 2 鳗鲡的的生活史 | 第14-15页 |
| 第二节 鳗鲡的性分化与性腺发育 | 第15-19页 |
| 1 鳗鲡的性分化 | 第15-16页 |
| 2 鳗鲡性腺的发育 | 第16-19页 |
| ·精子发生过程和精巢组织学分期 | 第16-17页 |
| ·卵细胞生长发育过程和卵巢组织学分期 | 第17-19页 |
| 第三节 鳗鲡人工繁殖的研究进展 | 第19-21页 |
| 1 鳗鲡人工繁殖的背景 | 第19-20页 |
| 2 人工诱导鳗鲡性腺发育与排卵的研究 | 第20页 |
| 3 人工孵化仔鳗发育的研究 | 第20-21页 |
| 第四节 鳗鲡繁殖内分泌学的研究 | 第21-22页 |
| 第五节 存在问题 | 第22-24页 |
| 第二章 实验部分 | 第24-55页 |
| 第一节 激素诱导花鳗鲡精巢发育成熟及其精子发生的组织学研究 | 第24-32页 |
| 1 材料 | 第24-25页 |
| ·试验用鱼 | 第24页 |
| ·试验场所 | 第24页 |
| ·主要试剂和其它试验用品 | 第24-25页 |
| ·主要仪器设备 | 第25页 |
| 2 方法 | 第25-26页 |
| ·实验设计 | 第25页 |
| ·鱼类生理盐水的配制方法 | 第25页 |
| ·性腺成熟系数((SI)、肝脏系数和消化道系数的计算 | 第25页 |
| ·组织的石蜡切片及HE染色 | 第25-26页 |
| ·组织包埋及石蜡切片 | 第26页 |
| ·HE染色 | 第26页 |
| 3 结果 | 第26-28页 |
| ·人工催熟的效果 | 第26-27页 |
| ·花鳗鲡精子发生的组织学研究 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-32页 |
| 第二节 人工催熟雄性花鳗鲡精子活力的观察 | 第32-39页 |
| 1 材料 | 第32页 |
| ·试验用鱼 | 第32页 |
| ·试验场所 | 第32页 |
| ·实验试剂和其他实验用品 | 第32页 |
| ·主要实验仪器 | 第32页 |
| 2 方法 | 第32-33页 |
| ·实验设计 | 第32-33页 |
| ·测定方法 | 第33页 |
| 3 结果 | 第33-35页 |
| ·不同盐度对花鳗鲡精子活力的影响 | 第33-34页 |
| ·不同pH对花鳗鲡精子活力的影响 | 第34页 |
| ·不同金属离子(Mg~(2+)、Ca~(2+)、Na~+和K~+)对花鳗鲡精子活力的影响 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-39页 |
| ·盐度对花鳗鲡精子活力的影响 | 第35-36页 |
| ·pH对花鳗鲡精子活力的影响 | 第36页 |
| ·金属离子对花鳗鲡精子活力的影响 | 第36-39页 |
| 第三节 人工催熟雄性花鳗鲡精子结构的观察以及脑垂体促性腺激素细胞和肝脏细胞超显微结构变化 | 第39-47页 |
| 1 材料 | 第39-40页 |
| ·试验用鱼 | 第39页 |
| ·试验场所 | 第39页 |
| ·实验试剂和其他实验用品 | 第39-40页 |
| ·主要实验仪器 | 第40页 |
| 2 方法 | 第40-41页 |
| ·实验设计 | 第40页 |
| ·精子形态特征的观察方法 | 第40-41页 |
| ·精子pH和密度的测定方法 | 第41页 |
| ·催产前后脑垂体、肝脏的超显微结构变化的观察 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-42页 |
| ·精子形态结构的观察以及精液pH和精子密度 | 第41页 |
| ·脑垂体中促性腺激素(GtH)细胞的变化 | 第41-42页 |
| ·肝脏细胞结构的超显微变化 | 第42页 |
| 4 讨论 | 第42-47页 |
| ·关于鳗鲡精子的形态学 | 第42页 |
| ·脑垂体中GtH细胞超微结构的变化 | 第42页 |
| ·肝脏细胞超纤维结构的变化 | 第42-47页 |
| 第四节 人工诱导雄性花鳗鲡成熟过程中血清相关激素含量的变化 | 第47-55页 |
| 1 材料 | 第47-48页 |
| ·试验动物 | 第47页 |
| ·试验场所 | 第47页 |
| ·主要试剂和其他实验用品 | 第47页 |
| ·试验仪器 | 第47-48页 |
| 2 方法 | 第48-51页 |
| ·实验设计 | 第48页 |
| ·血样采集与处理 | 第48页 |
| ·血清GtH含量的测定方法 | 第48-49页 |
| ·cGtH的标记 | 第48页 |
| ·结合率实验检验标记结果 | 第48-49页 |
| ·标记物的稀释 | 第48页 |
| ·抗体的配制 | 第48-49页 |
| ·标准曲线和样品稀释曲线的建立及样品测定 | 第49页 |
| ·雄性花鳗鲡精巢发育过程中血清T和E2含量的测定 | 第49-51页 |
| ·血清T含量的测定 | 第50页 |
| ·T标准品的配制 | 第50页 |
| ·操作程序 | 第50页 |
| ·血清E2含量的测定 | 第50-51页 |
| ·E2标准品配制 | 第50-51页 |
| ·操作程序 | 第51页 |
| ·血清11-KT含量的测定方法 | 第51页 |
| ·数据分析 | 第51页 |
| 3 结果 | 第51-54页 |
| ·鳗鲡精巢发育过程中血清GtH含量的变化 | 第51-52页 |
| ·诱导雄性鳗鲡精集发育成熟过程血清中类固醇激素含量的变化 | 第52-54页 |
| ·血清中T含量的变化 | 第52-53页 |
| ·血清中11-KT含量的变化 | 第53页 |
| ·血清中E2含量的变化 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-55页 |
| ·血清中GtH含量的变化规律 | 第54页 |
| ·血清中性类固醇激素含量的变化规律 | 第54-55页 |
| ·血清中T、11-kt的变化规律 | 第54页 |
| ·血清中E2的变化规律 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 附录 | 第60-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
