摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
缩略语表 | 第7-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-20页 |
1 Caveolin蛋白概述 | 第11-14页 |
·Caveolae的标志性蛋白——Caveolins | 第11-12页 |
·Caveolin蛋白的结构特征 | 第12页 |
·Caveolin蛋白的生物学功能 | 第12-14页 |
·参与胆固醇运输和脂类稳定 | 第12-13页 |
·参与细胞内吞和胞内运输 | 第13页 |
·参与信号转导的调控 | 第13页 |
·Caveolin与肿瘤 | 第13-14页 |
2 Caveolin蛋白与脑内雌激素信号通路 | 第14-15页 |
3 结语与展望 | 第15-16页 |
参考文献(References) | 第16-20页 |
第二章 生后早期大鼠脑内Cavolin-1蛋白表达的研究 | 第20-37页 |
前言 | 第20页 |
1 材料与仪器 | 第20-21页 |
·实验动物 | 第20页 |
·主要试剂 | 第20-21页 |
·主要仪器 | 第21页 |
2 实验方法 | 第21-29页 |
·大鼠大脑海马组织分离 | 第21页 |
·石蜡包埋法制作脑组织切片 | 第21-23页 |
·取材、固定 | 第21页 |
·脱色 | 第21-22页 |
·脱水 | 第22页 |
·透明 | 第22页 |
·浸蜡 | 第22页 |
·包埋、切片 | 第22页 |
·贴片和烤片 | 第22-23页 |
·伊红苏木素染色(HE染色) | 第23-24页 |
·免疫组织化学染色(Immunohistochemistry) | 第24页 |
·脑蛋白提取液的制备及蛋白含量的测定 | 第24-26页 |
·主要试剂配置 | 第24-25页 |
·脑组织蛋白的提取 | 第25页 |
·蛋白质浓度的测定 | 第25-26页 |
·SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第26-27页 |
·主要试剂配制 | 第26页 |
·分离胶及浓缩胶的配置 | 第26-27页 |
·蛋白质样品制备 | 第27页 |
·电泳 | 第27页 |
·蛋白质免疫印迹(WesternBlot) | 第27-28页 |
·主要试剂配置 | 第27页 |
·免疫印迹 | 第27-28页 |
·转膜 | 第27-28页 |
·封闭 | 第28页 |
·一抗结合 | 第28页 |
·二抗结合 | 第28页 |
·ECL显色 | 第28页 |
·统计分析 | 第28-29页 |
3 实验结果 | 第29-32页 |
·新生大鼠脑内不同部位Cavolin-1蛋白表达的比较 | 第29-30页 |
·大鼠脑发育不同时期海马内Cavolin-1蛋白表达的比较 | 第30-31页 |
·30日龄大鼠脑内不同部位Cavolin-1蛋白表达的比较 | 第31-32页 |
4 讨论 | 第32-34页 |
5 小结 | 第34-35页 |
参考文献(References) | 第35-37页 |
第三章 生后早期大鼠脑内ERα-36表达的研究 | 第37-49页 |
前言 | 第37页 |
1 材料与仪器 | 第37-38页 |
·实验动物 | 第37页 |
·主要试剂 | 第37-38页 |
·主要仪器 | 第38页 |
2 实验方法 | 第38-42页 |
·大鼠大脑海马组织分离 | 第38页 |
·脑蛋白提取液的制备及蛋白含量测定 | 第38-40页 |
·主要试剂配置 | 第38-39页 |
·脑组织蛋白的提取 | 第39页 |
·蛋白质浓度的测定 | 第39-40页 |
·SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第40-41页 |
·主要试剂配制 | 第40页 |
·分离胶及浓缩胶的配置 | 第40-41页 |
·蛋白质样品制备 | 第41页 |
·电泳 | 第41页 |
·蛋白质免疫印迹(WesternBlot)测定蛋白表达 | 第41-42页 |
·主要试剂配置 | 第41页 |
·免疫印迹 | 第41-42页 |
·转膜 | 第41-42页 |
·封闭 | 第42页 |
·一抗结合 | 第42页 |
·二抗结合 | 第42页 |
·ECL色 | 第42页 |
·统计分析 | 第42页 |
3 实验结果 | 第42-44页 |
·新生SD大鼠脑内各部位ERα-36的表达 | 第42-43页 |
·不同年龄SD大鼠大脑皮层及海马中ERα-36的表达 | 第43-44页 |
4 讨论 | 第44-46页 |
5 小结 | 第46-47页 |
参考文献(References) | 第47-49页 |
附件1 | 第49-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
作者简介 | 第57-58页 |