| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-23页 |
| 1.1 植物低温胁迫响应机制 | 第14-16页 |
| 1.1.1 低温胁迫对植物的影响 | 第14-15页 |
| 1.1.2 植物对低温胁迫的生理响应 | 第15-16页 |
| 1.2 转录组测序和代谢组学技术应用 | 第16-18页 |
| 1.2.1 转录组学简介 | 第16-17页 |
| 1.2.2 转录组学在逆境胁迫研究中的应用 | 第17页 |
| 1.2.3 代谢组学简介 | 第17页 |
| 1.2.4 代谢组学在环境胁迫研究中的应用 | 第17-18页 |
| 1.3 酚类化合物在植物低温胁迫中的作用 | 第18-22页 |
| 1.3.1 酚类化合物的含量和分布 | 第18页 |
| 1.3.2 酚类化合物的抗逆生理功能 | 第18-19页 |
| 1.3.3 酚类化合物的生物合成途径 | 第19-20页 |
| 1.3.4 酚类化合物合成的调控机制 | 第20-22页 |
| 1.4 本研究的目的及意义 | 第22-23页 |
| 第二章 低温胁迫下苗期烟草多酚代谢及其抗氧化能力分析 | 第23-32页 |
| 2.1 材料及方法 | 第23-27页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 实验处理 | 第23-24页 |
| 2.1.3 测定项目及方法 | 第24-27页 |
| 2.2 结果与分析 | 第27-31页 |
| 2.2.1 低温胁迫对烟苗形态和相对电导率的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.2 低温胁迫对烟苗抗氧化能力的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.3 低温胁迫对烟苗总酚和木质素含量的影响 | 第29页 |
| 2.2.4 低温胁迫对烟苗多酚代谢关键酶活性的影响 | 第29-30页 |
| 2.2.5 低温胁迫对烟苗多酚代谢相关基因表达的影响 | 第30-31页 |
| 2.3 讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 低温胁迫下苗期烟草代谢组学分析 | 第32-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第32-34页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第32页 |
| 3.1.2 实验处理 | 第32页 |
| 3.1.3 标准品与试剂 | 第32页 |
| 3.1.4 样品准备和提取 | 第32-33页 |
| 3.1.5 代谢物检测 | 第33页 |
| 3.1.6 信息分析流程 | 第33-34页 |
| 3.2 结果与分析 | 第34-39页 |
| 3.2.1 低温胁迫和对照处理的色谱图分析 | 第34-35页 |
| 3.2.2 样本的主成分分析(PCA) | 第35-36页 |
| 3.2.3 样本的正交偏最小二乘方-判别分析(OPLS-DA) | 第36-37页 |
| 3.2.4 低温胁迫下烟草代谢物的概述 | 第37-38页 |
| 3.2.5 低温胁迫下烟草差异性代谢物的变化 | 第38-39页 |
| 3.3 讨论 | 第39-41页 |
| 第四章 低温胁迫下苗期烟草转录组学分析 | 第41-61页 |
| 4.1 材料与方法 | 第42-45页 |
| 4.1.1 实验材料和处理 | 第42页 |
| 4.1.2 总RNA提取和cDNA合成 | 第42页 |
| 4.1.3 转录组数据库的构建 | 第42页 |
| 4.1.4 比对参考基因组和基因注释 | 第42页 |
| 4.1.5 基因表达水平和差异表达分析 | 第42-43页 |
| 4.1.6 差异基因的GO和 KEGG功能注释 | 第43页 |
| 4.1.7 实时荧光定量PCR(Quantitative real-time PCR,qRT-PCR)验证 | 第43-45页 |
| 4.2 结果与分析 | 第45-58页 |
| 4.2.1 测序质量分析 | 第45-46页 |
| 4.2.2 差异表达基因(DEGs)筛选 | 第46页 |
| 4.2.3 差异表达基因(DEGs)的GO功能分类和KEGG功能注释 | 第46-48页 |
| 4.2.4 烟草抗寒相关候选基因的筛选 | 第48-54页 |
| 4.2.5 差异表达基因的qRT-PCR验证 | 第54-56页 |
| 4.2.6 关键代谢途径基因差异表达分析 | 第56-58页 |
| 4.3 讨论 | 第58-61页 |
| 第五章 低温胁迫对苗期烟草多酚生物合成关键途径的影响 | 第61-80页 |
| 5.1 材料与方法 | 第62-65页 |
| 5.1.1 实验材料和处理 | 第62-63页 |
| 5.1.2 总RNA提取和cDNA合成 | 第63页 |
| 5.1.3 转录组数据库的构建 | 第63页 |
| 5.1.4 比对参考基因组和基因注释 | 第63页 |
| 5.1.5 基因表达水平和差异表达分析 | 第63页 |
| 5.1.6 差异基因的GO和 KEGG功能注释 | 第63页 |
| 5.1.7 实时荧光定量PCR(Quantitative real-time PCR,qRT-PCR)验证 | 第63-64页 |
| 5.1.8 代谢组检测样品准备与提取 | 第64页 |
| 5.1.9 标准品与试剂 | 第64页 |
| 5.1.10 样品准备和提取 | 第64页 |
| 5.1.11 代谢物检测 | 第64页 |
| 5.1.12 信息分析流程 | 第64-65页 |
| 5.1.13 多酚代谢物质含量检测 | 第65页 |
| 5.2 结果与分析 | 第65-78页 |
| 5.2.1 烟草叶片转录组文库构建 | 第65-66页 |
| 5.2.2 烟草叶片基因表达模式分析 | 第66-67页 |
| 5.2.3 烟草叶片代谢组学分析 | 第67-70页 |
| 5.2.4 烟草苯丙烷代谢物质积累及关键基因表达分析 | 第70-74页 |
| 5.2.5 烟草叶片多酚类物质含量变化 | 第74-75页 |
| 5.2.6 烟草叶片基因定量表达分析 | 第75-78页 |
| 5.3 讨论 | 第78-80页 |
| 第六章 低温胁迫条件下外源ABA对苗期烟草木质素合成的影响 | 第80-94页 |
| 6.1 材料与方法 | 第80-83页 |
| 6.1.1 实验材料和处理 | 第80-81页 |
| 6.1.2 测定项目及方法 | 第81-83页 |
| 6.2 结果与分析 | 第83-92页 |
| 6.2.1 低温胁迫下外源ABA对烟草丙二醛和相对电导率的影响 | 第83-84页 |
| 6.2.2 低温胁迫下外源ABA对烟草抗氧化酶活性的影响 | 第84-85页 |
| 6.2.3 低温胁迫下外源ABA对烟草总酚和木质素含量的影响 | 第85-86页 |
| 6.2.4 低温胁迫下外源ABA对烟草叶片木质素的影响 | 第86-87页 |
| 6.2.5 低温胁迫下外源ABA对烟草叶脉木质素沉淀模式的影响 | 第87-88页 |
| 6.2.6 低温胁迫下外源ABA对烟草ABA代谢的影响 | 第88-89页 |
| 6.2.7 低温胁迫下外源ABA对烟草ABA信号转导的影响 | 第89-91页 |
| 6.2.8 低温胁迫下外源ABA对烟草木质素合成关键基因表达的影响 | 第91-92页 |
| 6.3 讨论 | 第92-94页 |
| 第七章 全文结论 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-115页 |
| 致谢 | 第115-116页 |
| 作者简历 | 第116页 |
