缩略语表 | 第6-9页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
英文摘要 | 第11-13页 |
前言 | 第14-15页 |
文献回顾 | 第15-34页 |
第一部分 EI24在食管鳞癌组织中的表达及其临床意义 | 第34-41页 |
引言 | 第34页 |
1 材料 | 第34-35页 |
1.1 组织芯片 | 第34页 |
1.2 抗体 | 第34页 |
1.3 主要试剂 | 第34-35页 |
1.4 主要仪器 | 第35页 |
2 方法 | 第35-36页 |
2.1 免疫组化 | 第35-36页 |
2.2 统计分析 | 第36页 |
3 结果 | 第36-39页 |
3.1 EI24在人食管鳞癌组织中表达降低 | 第36-38页 |
3.2 EI24在食管鳞癌组织中的表达与患者各临床病理参数无显著相关性 | 第38-39页 |
3.3 EI24在食管鳞癌组织中的表达水平与患者预后正相关 | 第39页 |
4 讨论 | 第39-41页 |
第二部分 EI24对食管鳞癌细胞增殖的调节 | 第41-66页 |
引言 | 第41页 |
1 材料 | 第41-43页 |
1.1 细胞系 | 第41页 |
1.2 慢病毒 | 第41页 |
1.3 实验动物 | 第41-42页 |
1.4 抗体 | 第42页 |
1.5 主要试剂 | 第42页 |
1.6 主要仪器 | 第42-43页 |
1.7 实验耗材 | 第43页 |
2 方法 | 第43-58页 |
2.1 细胞培养 | 第43页 |
2.2 Westernblot | 第43-46页 |
2.3 EI24过表达食管鳞癌细胞模型构建 | 第46-52页 |
2.4 EI24低表达食管鳞癌细胞模型构建 | 第52-56页 |
2.5 平板克隆形成实验 | 第56页 |
2.6 MTT细胞体外生长曲线实验 | 第56-57页 |
2.7 流式细胞周期检测 | 第57页 |
2.8 裸鼠成瘤实验 | 第57-58页 |
3 结果 | 第58-63页 |
3.1 成功构建了过表达和低表达EI24的食管鳞癌细胞模型 | 第58-59页 |
3.2 上调EI24表达抑制食管鳞癌细胞的增殖 | 第59-61页 |
3.3 下调EI24表达促进食管鳞癌细胞的增殖 | 第61-63页 |
4 讨论 | 第63-66页 |
第三部分 EI24对食管鳞癌细胞耐药的调节 | 第66-75页 |
引言 | 第66页 |
1 材料 | 第66-67页 |
1.1 细胞系 | 第66页 |
1.2 主要试剂 | 第66页 |
1.3 主要仪器 | 第66-67页 |
2 方法 | 第67-68页 |
2.1 细胞培养 | 第67页 |
2.2 CCK-8法检测细胞对化疗药物的敏感性 | 第67页 |
2.3 流式细胞仪检测化疗药物诱导的细胞凋亡 | 第67-68页 |
2.4 细胞膜药物转运实验:细胞内阿霉素蓄积和泵出的检测 | 第68页 |
3 结果 | 第68-73页 |
3.1 上调EI24表达抑制食管鳞癌细胞的耐药 | 第68-71页 |
3.2 下调EI24表达促进食管鳞癌细胞多药耐药 | 第71-73页 |
4 讨论 | 第73-75页 |
第四部分 EI24调节食管鳞癌增殖和耐药的分子机制 | 第75-108页 |
引言 | 第75页 |
1 材料 | 第75-76页 |
1.1 细胞系 | 第75页 |
1.2 基因芯片 | 第75页 |
1.3 主要试剂 | 第75-76页 |
1.4 主要仪器 | 第76页 |
2 方法 | 第76-87页 |
2.1 细胞培养 | 第76页 |
2.2 细胞总RNA提取 | 第76-77页 |
2.3 总RNA质检 | 第77-78页 |
2.4 3'IVT反应 | 第78页 |
2.5 杂交 | 第78页 |
2.6 芯片数据的质量评估 | 第78-83页 |
2.7 数据过滤 | 第83页 |
2.8 显著性差异分析 | 第83-87页 |
2.9 显著性差异基因的生物信息学分析 | 第87页 |
3 结果 | 第87-105页 |
3.1 EC109-OE和EC109-NC差异基因IPA分析结果 | 第87-97页 |
3.2 TE-1-KO和TE-1-NC差异基因IPA分析结果 | 第97-105页 |
4 讨论 | 第105-108页 |
小结 | 第108-109页 |
参考文献 | 第109-117页 |
个人简历和研究成果 | 第117-119页 |
致谢 | 第119页 |