| 摘要 | 第9-13页 |
| ABSTRACT | 第13-18页 |
| 第1章 绪论 | 第19-37页 |
| 1.文献综述 | 第19-33页 |
| 1.1 汞的生物地球化学循环 | 第19-28页 |
| 1.1.1 汞的甲基化 | 第19-21页 |
| 1.1.2 汞甲基化机制 | 第21-23页 |
| 1.1.3 影响汞甲基化的环境因子 | 第23-26页 |
| 1.1.4 MeHg的去甲基化 | 第26-27页 |
| 1.1.5 Hg(Ⅱ)的还原 | 第27页 |
| 1.1.6 Hg~0的氧化 | 第27-28页 |
| 1.2 湿地汞的生物地球化学研究进展 | 第28-33页 |
| 1.2.1 湿地汞的研究进展 | 第28-30页 |
| 1.2.2 典型湿地汞的研究现状 | 第30-33页 |
| 2.立题依据 | 第33-35页 |
| 2.1 选题背景 | 第33-35页 |
| 2.2 研究目标 | 第35页 |
| 3.研究内容 | 第35-36页 |
| (1)消落带土壤TCB的动态变化及其与甲基汞的相关性 | 第35页 |
| (2)消落带土壤微生物群落及汞甲基化对干湿交替环境的响应 | 第35页 |
| (3)消落带土壤汞甲基化细菌的筛选与鉴定 | 第35页 |
| (4)功能菌株的全基因组测序及其汞甲基化途径探讨 | 第35-36页 |
| (5)Periphyton对湿地水体MeHg的贡献 | 第36页 |
| (6)EPS对Hg形态的影响 | 第36页 |
| 4.技术路线 | 第36-37页 |
| 第2章 消落带土壤TCB动态变化及其与MEHG的相关性 | 第37-47页 |
| 2.1 材料与方法 | 第38-40页 |
| 2.1.1 研究区概况 | 第38页 |
| 2.1.2 土壤样品采集 | 第38-39页 |
| 2.1.3 土壤可培养细菌数量的测定 | 第39-40页 |
| 2.1.4 土壤MeHg的测定 | 第40页 |
| 2.1.5 数据处理 | 第40页 |
| 2.2 结果与分析 | 第40-45页 |
| 2.2.1 消落带不同水位高程土壤可培养细菌分布特征 | 第40-44页 |
| 2.2.2 土壤MeHg与TCB的相关性 | 第44-45页 |
| 2.3 本章讨论 | 第45页 |
| 2.4 本章小结 | 第45-47页 |
| 第3章 消落带土壤微生物群落及汞甲基化对干湿交替环境的响应 | 第47-75页 |
| 3.1 材料与方法 | 第47-52页 |
| 3.1.1 研究区概况 | 第47-48页 |
| 3.1.2 样品采集 | 第48-49页 |
| 3.1.3 DNA提取 | 第49-50页 |
| 3.1.4 PCR反应 | 第50-51页 |
| 3.1.5 PCR产物的纯化 | 第51页 |
| 3.1.6 454高通量测序 | 第51页 |
| 3.1.7 汞及理化性质分析 | 第51-52页 |
| 3.1.8 数据处理 | 第52页 |
| 3.1.9 核苷酸序列登录号 | 第52页 |
| 3.2 结果与分析 | 第52-71页 |
| 3.2.1 土壤样品理化因子测定及相关性分析 | 第52-54页 |
| 3.2.2 土壤THg和MeHg的时空分布特征 | 第54-56页 |
| 3.2.3 土壤微生物总DNA的提取及PCR扩增 | 第56-57页 |
| 3.2.4 土壤细菌群落多样性和组成分析 | 第57-63页 |
| 3.2.5 土壤古菌群落多样性和组成分析 | 第63-68页 |
| 3.2.6 干湿交替对土壤微生物丰度和多样性的影响 | 第68-71页 |
| 3.3 本章讨论 | 第71-73页 |
| 3.4 本章小结 | 第73-75页 |
| 第4章 消落带土壤汞甲基化细菌的筛选与鉴定 | 第75-107页 |
| 4.1 材料与方法 | 第76-83页 |
| 4.1.1 菌株筛选 | 第76-77页 |
| 4.1.2 菌株鉴定 | 第77-79页 |
| 4.1.3 纯培养下菌株汞甲基化能力验证 | 第79-80页 |
| 4.1.4 干湿交替条件下菌株的汞甲基化能力验证 | 第80-83页 |
| 4.1.5 质量控制与数据分析 | 第83页 |
| 4.2 结果与分析 | 第83-103页 |
| 4.2.1 汞甲基化细菌的分离 | 第83-84页 |
| 4.2.2 菌株16SrDNA系统发育分析 | 第84-88页 |
| 4.2.3 菌株形态和生理生化分析 | 第88-91页 |
| 4.2.4 有氧纯培养下菌株的汞甲基化能力(以TGRB4为例) | 第91-94页 |
| 4.2.5 干湿交替条件下菌株的汞甲基化能力 | 第94-101页 |
| 4.2.5.1 土壤细菌的变化特征 | 第94-95页 |
| 4.2.5.2 土壤甲基汞的变化特征 | 第95-96页 |
| 4.2.5.3 水体甲基汞的变化特征 | 第96-97页 |
| 4.2.5.4 土壤THg的变化特征 | 第97页 |
| 4.2.5.5 土壤中Hg的赋存形态及其变化特征 | 第97-101页 |
| 4.2.6 干湿交替条件下的汞甲基化率 | 第101页 |
| 4.2.7 干湿交替条件下土壤汞甲基化的影响因素讨论 | 第101-103页 |
| 4.3 本章讨论 | 第103-104页 |
| 4.4 本章小结 | 第104-107页 |
| 第5章 功能菌株的全基因测序及其甲基化途径探讨 | 第107-119页 |
| 5.1 材料与方法 | 第107-109页 |
| 5.1.1 基因组DNA的提取与检测 | 第107-108页 |
| 5.1.2 全基因组测序 | 第108页 |
| 5.1.3 生物信息学分析 | 第108-109页 |
| 5.2 结果与分析 | 第109-113页 |
| 5.2.1 菌株TGRB4的测序结果 | 第109-110页 |
| 5.2.2 基因功能注释 | 第110-113页 |
| 5.3 本章讨论 | 第113-116页 |
| 5.3.1 与汞甲基化相关的功能基因组学研究 | 第113-115页 |
| 5.3.2 菌株TGRB4的汞甲基化途径 | 第115-116页 |
| 5.4 本章小结 | 第116-119页 |
| 第6章 PERIPHYTON对湿地水体MEHG的贡献 | 第119-129页 |
| 6.1 材料与方法 | 第120-121页 |
| 6.1.1 样品采集 | 第120页 |
| 6.1.2 分析方法 | 第120-121页 |
| 6.2 结果与讨论 | 第121-127页 |
| 6.2.1 Periphyton的基本特征 | 第121-122页 |
| 6.2.2 Periphyton及水体THg的分布特征 | 第122-125页 |
| 6.2.3 Periphyton及水体MeHg的分布特征 | 第125-127页 |
| 6.3 本章小结 | 第127-129页 |
| 第7章 PERIPHYTON胞外聚合物对汞形态的影响 | 第129-145页 |
| 7.1 材料与方法 | 第129-131页 |
| 7.1.1 样品采集与处理 | 第129-130页 |
| 7.1.2 EPS溶液的制备 | 第130页 |
| 7.1.3 EPS与Hg2+的结合 | 第130-131页 |
| 7.1.4 荧光猝灭滴定试验 | 第131页 |
| 7.1.5 荧光光谱分析 | 第131页 |
| 7.1.6 傅里叶红外光谱(FTIR-AIR)特征 | 第131页 |
| 7.2 结果与分析 | 第131-142页 |
| 7.2.1 EPS对Hg2+结合行为的发现 | 第131-132页 |
| 7.2.2 EPS对Hg2+分配的影响 | 第132-133页 |
| 7.2.3 EPS的荧光光谱特征 | 第133-135页 |
| 7.2.4 Hg2+与EPS的配位作用 | 第135-136页 |
| 7.2.5 荧光猝灭方式 | 第136-138页 |
| 7.2.6 EPS与Hg2+的结合常数 | 第138-140页 |
| 7.2.7 Hg2+对EPS结构变化的影响 | 第140-142页 |
| 7.3 本章讨论 | 第142-143页 |
| 7.4 本章小结 | 第143-145页 |
| 第8章 结论与建议 | 第145-149页 |
| 8.1 结论 | 第145-146页 |
| 8.2 主要创新点 | 第146页 |
| 8.3 建议 | 第146-149页 |
| 参考文献 | 第149-163页 |
| 致谢 | 第163-165页 |
| 发表论文及参加课题 | 第165-166页 |
