中文摘要 | 第4-7页 |
abstract | 第7-10页 |
缩略词表 | 第15-17页 |
第1章 绪论 | 第17-29页 |
1.1 周围神经系统 | 第17-20页 |
1.1.1 周围神经系统组成 | 第17-18页 |
1.1.2 周围神经损伤、变性及再生 | 第18-19页 |
1.1.3 周围神经损伤的修复 | 第19-20页 |
1.2 施旺细胞 | 第20-25页 |
1.2.1 施旺细胞概述 | 第21页 |
1.2.2 施旺细胞参与神经再生修复 | 第21-22页 |
1.2.3 施旺细胞在神经再生中的作用及机制 | 第22-25页 |
1.2.4 施旺细胞基因调控研究 | 第25页 |
1.3 miRNA | 第25-29页 |
1.3.1 miRNA与神经系统 | 第25-26页 |
1.3.2 miRNA与神经损伤 | 第26页 |
1.3.3 miRNA在周围神经再生中的作用 | 第26-27页 |
1.3.4 miR-210与神经损伤 | 第27-29页 |
第2章 MIR-210在不同时期大鼠坐骨神经损伤中的表达 | 第29-37页 |
2.1 实验仪器及材料 | 第29-30页 |
2.1.1 主要仪器 | 第29页 |
2.1.2 主要试剂 | 第29-30页 |
2.1.3 主要试剂的配置 | 第30页 |
2.2 实验方法 | 第30-33页 |
2.2.1 动物饲养及管理 | 第30页 |
2.2.2 坐骨神经损伤大鼠模型建立 | 第30页 |
2.2.3 实验分组及取材 | 第30-31页 |
2.2.4 Real-timePCR检测不同损伤时期miR-210的表达 | 第31-33页 |
2.2.5 统计分析 | 第33页 |
2.3 实验结果 | 第33-35页 |
2.3.1 坐骨神经损伤大鼠一般状态 | 第33页 |
2.3.2 神经损伤后不同时期 mi R-210 的表达 | 第33-35页 |
2.4 讨论 | 第35-37页 |
第3章 MIR-210对施旺细胞增殖迁移的影响 | 第37-51页 |
3.1 实验仪器及材料 | 第37-39页 |
3.1.1 主要仪器 | 第37-38页 |
3.1.2 主要试剂 | 第38页 |
3.1.3 主要试剂的配置 | 第38-39页 |
3.2 实验方法 | 第39-42页 |
3.2.1 坐骨神经施旺细胞原代分离 | 第39页 |
3.2.2 细胞培养及传代 | 第39-40页 |
3.2.3 实验分组及慢病毒转染 | 第40页 |
3.2.4 Real-timePCR检测慢病毒转染后miR-210的表达 | 第40页 |
3.2.5 MTT实验检测细胞增殖 | 第40-41页 |
3.2.6 Transwell实验检测细胞迁移 | 第41页 |
3.2.7 划痕实验检测细胞迁移 | 第41-42页 |
3.2.8 统计分析 | 第42页 |
3.3 实验结果 | 第42-48页 |
3.3.1 施旺细胞原代培养 | 第42页 |
3.3.2 miR-210慢病毒转染对施旺细胞miR-210表达水平的影响 | 第42-44页 |
3.3.3 miR-210对施旺细胞增殖能力的影响 | 第44-45页 |
3.3.4 miR-210对施旺细胞迁移能力的影响 | 第45-48页 |
3.4 讨论 | 第48-51页 |
第4章 MIR-210对施旺细胞神经再生相关蛋白表达的影响 | 第51-63页 |
4.1 实验仪器及材料 | 第51-53页 |
4.1.1 主要仪器 | 第51页 |
4.1.2 主要试剂 | 第51-52页 |
4.1.3 主要试剂的配置 | 第52-53页 |
4.2 实验方法 | 第53-56页 |
4.2.1 Westernblot检测蛋白表达 | 第53-56页 |
4.2.2 统计分析 | 第56页 |
4.3 实验结果 | 第56-61页 |
4.3.1 miR-210对生长相关蛋白43(GAP-43)表达的影响 | 第56-58页 |
4.3.2 miR-210对髓鞘相关糖蛋白(MAG)表达的影响 | 第58-59页 |
4.3.3 miR-210对髓鞘碱性蛋白(MBP)表达的影响 | 第59-61页 |
4.4 讨论 | 第61-63页 |
第5章 结论 | 第63-65页 |
参考文献 | 第65-81页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第81-82页 |
致谢 | 第82页 |