| 中文摘要 | 第12-13页 |
| ABSTRACT | 第13-14页 |
| 1 综述 | 第15-24页 |
| 1.1 小麦高分子量谷蛋白亚基概况 | 第16-20页 |
| 1.1.1 小麦籽粒贮藏蛋白的组成 | 第16页 |
| 1.1.2 小麦高分子量谷蛋白亚基的命名与结构 | 第16-18页 |
| 1.1.3 小麦高分子量谷蛋白亚基的基因定位与等位变异 | 第18页 |
| 1.1.4 小麦高分子量谷蛋白亚基的遗传性特点 | 第18-19页 |
| 1.1.5 小麦高分子量谷蛋白亚基与小麦品质的关系 | 第19-20页 |
| 1.2 小麦高分子量谷蛋白亚基的研究方法及其应用 | 第20-22页 |
| 1.2.1 液相色谱仪法(liquidphasechromatographic,LPC) | 第20页 |
| 1.2.2 酸性聚丙烯酰胺凝胶电泳法(A-PAGE) | 第20页 |
| 1.2.3 免疫化学技术 | 第20-21页 |
| 1.2.4 十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)技术 | 第21页 |
| 1.2.5 分子标记技术 | 第21-22页 |
| 1.3 本项研究的目的与意义 | 第22-24页 |
| 2 小麦HMW-GS分子检测中DNA提取方法的改良 | 第24-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 2.1.1 材料 | 第24页 |
| 2.1.2 试剂 | 第24页 |
| 2.1.3 仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.4 DNA提取方法 | 第25-26页 |
| 2.1.5 DNA质量检测 | 第26页 |
| 2.2 结果与分析 | 第26-28页 |
| 2.2.1 DNA产率 | 第26-27页 |
| 2.2.2 DNA质量 | 第27-28页 |
| 2.2.3 HMW-GS分子检测 | 第28页 |
| 2.3 讨论 | 第28-30页 |
| 2.3.1 改良CTAB法的优点 | 第28页 |
| 2.3.2 改良CTAB法所提取的DNA的产率 | 第28-29页 |
| 2.3.3 改良CTAB法所提取的DNA的A260/280和A260/230值均在理想范围内 | 第29-30页 |
| 3 小麦高分子量谷蛋白亚基分子检测体系的构建 | 第30-44页 |
| 3.1 材料与方法 | 第30-35页 |
| 3.1.1 材料 | 第30-31页 |
| 3.1.2 仪器 | 第31页 |
| 3.1.3 应用SDS-PAGE技术检测小麦HMW-GS组成 | 第31-32页 |
| 3.1.4 应用AS-PCR技术检测小麦HMW-GS组成 | 第32-35页 |
| 3.2 结果与分析 | 第35-42页 |
| 3.2.1 SDS-PAGE方法分析40个小麦品种的HMW-GS组成 | 第35-36页 |
| 3.2.2 引物筛选结果 | 第36页 |
| 3.2.3 AS-PCR方法分析40个小麦品种HMW-GS组成 | 第36-42页 |
| 3.2.4 构建鉴定小麦HMW-GS中优质亚基的分子检测体系 | 第42页 |
| 3.3 讨论 | 第42-44页 |
| 4 小麦HMW-GS分子检测体系的应用 | 第44-51页 |
| 4.1 材料和方法 | 第44-46页 |
| 4.1.1 材料 | 第44-46页 |
| 4.1.2 应用AS-PCR技术对优质亚基进行检测 | 第46页 |
| 4.1.3 应用SDS-PAGE技术对其余亚基进行检测 | 第46页 |
| 4.2 结果与分析 | 第46-49页 |
| 4.2.1 小麦高分子量谷蛋白亚基类型、等位变异及频率 | 第46-47页 |
| 4.2.2 小麦高分子量谷蛋白亚基组合类型和得分分析 | 第47-49页 |
| 4.3 讨论 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 5.1 所建立的DNA提取方法用于小麦HMW-GS的分子检测简单、高效 | 第51页 |
| 5.2 构建了一套适用于小麦HMW-GS中优质亚基检测的分子技术体系 | 第51页 |
| 5.3 113份CIMMYT小麦材料可以作为山西省小麦品质育种的基础材料 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 缩略词表 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 个人简历 | 第60-61页 |
