| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-18页 |
| 1.1 麦蚜的概述 | 第11-12页 |
| 1.1.1 麦蚜的形态特征 | 第11页 |
| 1.1.2 麦蚜的生活史与生活习性 | 第11-12页 |
| 1.1.3 麦蚜发生和危害 | 第12页 |
| 1.2 种群遗传多样性及种群分化 | 第12-13页 |
| 1.2.1 种群遗传多样性 | 第12页 |
| 1.2.2 种群遗传多样性的产生机制 | 第12页 |
| 1.2.3 种群遗传多样性的影响因素 | 第12-13页 |
| 1.2.4 种群分化 | 第13页 |
| 1.3 本研究中所使用的分子标记 | 第13-16页 |
| 1.3.1 微卫星标记 | 第14-15页 |
| 1.3.2 线粒体标记 | 第15-16页 |
| 1.4 本文的研究目的和意义 | 第16-17页 |
| 1.5 技术路线 | 第17-18页 |
| 第二章 微卫星检测我国麦长管蚜种群的遗传多样性 | 第18-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第18-22页 |
| 2.1.1 麦长管蚜样本的采集 | 第18页 |
| 2.1.2 单头麦蚜基因组DNA的提取 | 第18-19页 |
| 2.1.3 微卫星标记体系的建立 | 第19页 |
| 2.1.4 PCR扩增及产物的检测 | 第19-20页 |
| 2.1.5 数据分析 | 第20-22页 |
| 2.2 结果 | 第22-28页 |
| 2.2.1 无效等位基因的检测 | 第22页 |
| 2.2.2 连锁不平衡检测 | 第22-23页 |
| 2.2.3 哈迪温伯格平衡检验 | 第23页 |
| 2.2.4 遗传多样性分析 | 第23-24页 |
| 2.2.5 种群遗传分化及基因流 | 第24-26页 |
| 2.2.6 种群遗传结构 | 第26-28页 |
| 2.3 讨论 | 第28-30页 |
| 2.3.1 高度的种群遗传多样性 | 第28-29页 |
| 2.3.2 遗传分化和遗传结构 | 第29-30页 |
| 2.4 小结 | 第30-31页 |
| 第三章 基于COI基因对麦长管蚜全国种群的遗传结构分析 | 第31-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-32页 |
| 3.1.1 麦长管蚜样本的采集 | 第31页 |
| 3.1.2 单头麦蚜基因组DNA的提取 | 第31页 |
| 3.1.3 麦长管蚜COI基因片段的PCR扩增 | 第31-32页 |
| 3.1.4 数据分析 | 第32页 |
| 3.2 结果 | 第32-38页 |
| 3.2.1 种群遗传多样性分析 | 第32-33页 |
| 3.2.2 单倍型的分布与分化 | 第33-36页 |
| 3.2.3 系统进化树 | 第36页 |
| 3.2.4 单倍型简约网状图 | 第36-37页 |
| 3.2.5 种群的遗传分化分析 | 第37-38页 |
| 3.2.6 种群遗传结构分析 | 第38页 |
| 3.3 讨论 | 第38-39页 |
| 3.3.1 遗传多样性 | 第38-39页 |
| 3.3.2 遗传分化 | 第39页 |
| 3.3.3 种群历史动态 | 第39页 |
| 3.4 小结 | 第39-41页 |
| 第四章 微卫星检测我国禾谷缢管蚜种群的遗传多样性 | 第41-55页 |
| 4.1 材料与方法 | 第41-44页 |
| 4.1.1 禾谷缢管蚜样本的采集 | 第41-42页 |
| 4.1.2 单头麦蚜基因组DNA的提取 | 第42页 |
| 4.1.3 微卫星标记体系的建立 | 第42-43页 |
| 4.1.4 PCR扩增及产物的检测 | 第43页 |
| 4.1.5 数据分析 | 第43-44页 |
| 4.2 结果 | 第44-52页 |
| 4.2.1 无效等位基因的检测 | 第44页 |
| 4.2.2 连锁不平衡检测 | 第44-46页 |
| 4.2.3 哈迪温伯格平衡检验 | 第46页 |
| 4.2.4 微卫星位点多态性 | 第46-47页 |
| 4.2.5 遗传多态性分析 | 第47页 |
| 4.2.6 种群遗传分化及基因流分析 | 第47-49页 |
| 4.2.7 种群遗传结构分析 | 第49-52页 |
| 4.3 讨论 | 第52-54页 |
| 4.3.1 高度的种群遗传多样性 | 第52-53页 |
| 4.3.2 遗传分化和遗传结构 | 第53-54页 |
| 4.4 小结 | 第54-55页 |
| 第五章 基于COI基因对禾谷缢管蚜全国种群的遗传结构分析 | 第55-62页 |
| 5.1 材料与方法 | 第55-56页 |
| 5.1.1 禾谷缢管蚜样本的采集 | 第55页 |
| 5.1.2 单头麦蚜基因组DNA的提取 | 第55页 |
| 5.1.3 禾谷缢管蚜COI基因片段的PCR扩增 | 第55-56页 |
| 5.1.4 数据分析 | 第56页 |
| 5.2 结果 | 第56-60页 |
| 5.2.1 种群遗传多样性分析 | 第56-57页 |
| 5.2.2 单倍型的分布与分化 | 第57页 |
| 5.2.3 系统进化树 | 第57-58页 |
| 5.2.4 COI基因单倍型的网状图 | 第58-59页 |
| 5.2.5 种群的遗传分化分析 | 第59页 |
| 5.2.6 种群遗传结构分析 | 第59-60页 |
| 5.3 讨论 | 第60-61页 |
| 5.3.1 遗传多样性 | 第60页 |
| 5.3.2 遗传分化 | 第60-61页 |
| 5.3.3 种群历史动态 | 第61页 |
| 5.4 小结 | 第61-62页 |
| 第六章 GPCRs对P450的调控 | 第62-81页 |
| 6.1 引言 | 第62-66页 |
| 6.1.1 杀虫药剂抗性机制 | 第62页 |
| 6.1.2 细胞色素P450 | 第62-63页 |
| 6.1.3 G蛋白偶联受体 | 第63-65页 |
| 6.1.4 研究目的和意义 | 第65-66页 |
| 6.1.5 研究路线 | 第66页 |
| 6.2 材料与方法 | 第66-75页 |
| 6.2.1 家蝇品系 | 第66-67页 |
| 6.2.2 RNA的提取和cDNA的合成 | 第67页 |
| 6.2.3 荧光定量PCR | 第67-69页 |
| 6.2.4 GPCR基因全长的克隆 | 第69-71页 |
| 6.2.5 转基因果蝇品系的建立 | 第71-73页 |
| 6.2.6 杀虫剂生物测定 | 第73-74页 |
| 6.2.7 转基因果蝇中GPCR基因的表达水平 | 第74页 |
| 6.2.8 转基因果蝇P450相对表达量的检测 | 第74页 |
| 6.2.9 GPCR基因在家蝇染色体上的定位 | 第74-75页 |
| 6.3 结果 | 第75-78页 |
| 6.3.1 GPCR基因的筛选 | 第75页 |
| 6.3.2 基因定位 | 第75-76页 |
| 6.3.3 GPCR基因在转基因果蝇中的表达 | 第76-77页 |
| 6.3.4 生物测定 | 第77页 |
| 6.3.5 P450基因的相对表达水平 | 第77-78页 |
| 6.4 讨论 | 第78-79页 |
| 6.4.1 GPCR基因的定位 | 第78-79页 |
| 6.4.2 GPCR基因的功能研究 | 第79页 |
| 6.5 结论 | 第79-81页 |
| 第七章 全文总结 | 第81-83页 |
| 7.1 全文总结 | 第81-82页 |
| 7.2 本研究创新之处 | 第82页 |
| 7.3 问题与展望 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 个人简介 | 第96页 |