| 摘要 | 第11-15页 |
| Abstract | 第15-19页 |
| 缩略语表(Abbreviation) | 第20-22页 |
| 第一部分 文献综述 | 第22-48页 |
| 第一章 胫骨软骨发育不良研究进展 | 第22-27页 |
| 1 家禽胫骨软骨发育不良概况 | 第22-23页 |
| 2 家禽胫骨软管发育不良特征 | 第23页 |
| 3 家禽TD的发病机理 | 第23-27页 |
| 3.1 家禽TD与甲状旁腺及甲状旁腺激素相关肽 | 第23-24页 |
| 3.2 家禽TD与维生素D3代谢 | 第24-25页 |
| 3.3 家禽TD与成纤维细胞生长因子 | 第25页 |
| 3.4 家禽TD与基质金属蛋白酶 | 第25-26页 |
| 3.5 家禽TD与血管 | 第26-27页 |
| 第二章 藏鸡和高海拔缺氧 | 第27-35页 |
| 1 藏鸡 | 第27-29页 |
| 1.1 藏鸡情况概况 | 第27-28页 |
| 1.2 藏鸡血液指标对高原低氧环境的适应性 | 第28-29页 |
| 1.2.1 藏鸡高原适应性与血红蛋白 | 第28-29页 |
| 1.2.2 藏鸡高原适应性与血管内皮生长因子 | 第29页 |
| 2 高海拔低氧 | 第29-35页 |
| 2.1 高海拔环境适应性的生理基础 | 第30-31页 |
| 2.2 低氧和缺氧诱导因子1α(HIF-1α) | 第31页 |
| 2.3 HIF-1α的活性调节 | 第31-33页 |
| 2.4 HIF-1ɑ的靶基因及生物学功能 | 第33-35页 |
| 第三章 血管调控和骨形成的研究进展 | 第35-48页 |
| 1 血管和血管生成介绍 | 第35页 |
| 2 血管生成过程调控 | 第35-38页 |
| 3 动物的骨骼 | 第38-39页 |
| 4 家禽的骨骼生长 | 第39-40页 |
| 5 骨血管的调控及对骨骼的作用 | 第40-48页 |
| 5.1 VEGF信号参与的软骨内血管生成 | 第40-41页 |
| 5.2 缺氧在软骨内血管生成的作用 | 第41-43页 |
| 5.3 基质金属蛋白酶的作用 | 第43-44页 |
| 5.4 FGFs信号在血管生成和骨生成上的调控 | 第44-45页 |
| 5.5 Notch信号通路在骨血管生成中的调控 | 第45-46页 |
| 5.6 调控骨血管生成的其他生长因子和转录因子 | 第46-48页 |
| 第二部分 试验研究 | 第48-131页 |
| 第四章 藏鸡与肉鸡在生产性能和骨骼发育上的对比研究 | 第48-64页 |
| 1 研究背景 | 第48-49页 |
| 2 材料和方法 | 第49-57页 |
| 2.1 试验材料 | 第49-50页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第49页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第49页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第49-50页 |
| 2.2 试验 | 第50-57页 |
| 2.2.1 试验动物与分组处理 | 第50-51页 |
| 2.2.2 肉鸡生长性能统计 | 第51页 |
| 2.2.3 肉鸡体重和胫骨相关指标测量 | 第51-52页 |
| 2.2.4 肉鸡胫骨生长板组织病理学观察 | 第52-53页 |
| 2.2.5 胫骨组织总 RNA 提取及 cDNA 合成 | 第53-55页 |
| 2.2.6 胫骨基因表达水平qRT-PCR分析 | 第55-56页 |
| 2.2.7 血清中蛋白含量ELISA检测 | 第56-57页 |
| 2.2.8 数据统计及分析 | 第57页 |
| 3 试验结果 | 第57-62页 |
| 3.1 藏鸡和肉鸡生产性能比较 | 第57-58页 |
| 3.2 藏鸡和肉鸡胫骨指数比较 | 第58-59页 |
| 3.3 藏鸡和肉鸡胫骨生长板区域血管分布情况 | 第59-61页 |
| 3.4 藏鸡和肉鸡血管生成相关基因表达情况 | 第61页 |
| 3.5 藏鸡和肉鸡血清中血管生长相关蛋白的水平 | 第61-62页 |
| 4 讨论 | 第62-64页 |
| 第五章 高海拔低氧环境对肉鸡胫骨生长板上HIF-1α/VEGF/VEGFR信号通路表达的影响 | 第64-84页 |
| 1 研究背景 | 第64-65页 |
| 2 材料和方法 | 第65-73页 |
| 2.1 试验材料 | 第65-66页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第65页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第65-66页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第66页 |
| 2.2 试验方法 | 第66-73页 |
| 2.2.1 试验动物与分组处理 | 第66-68页 |
| 2.2.2 生长性能 | 第68页 |
| 2.2.3 血液指标 | 第68页 |
| 2.2.4 胫骨生长板形态学和病理学观察 | 第68页 |
| 2.2.5 胫骨总RNA的提取及cDNA的合成 | 第68页 |
| 2.2.6 qRT-PCR分析胫骨中HIF-1ɑ、VEGFA和VEFGFR1基因的表达 | 第68-69页 |
| 2.2.7 WesternBlot检测胫骨中HIF-1ɑ、VEGFA和VEFGFR1蛋白的水平 | 第69-72页 |
| 2.2.8 ELISA检测血清蛋白含量 | 第72页 |
| 2.2.9 数据统计及分析 | 第72-73页 |
| 3 试验结果 | 第73-80页 |
| 3.1 低氧对肉鸡死亡率的影响 | 第73页 |
| 3.2 高海拔低氧对肉鸡生产性能的影响 | 第73-74页 |
| 3.3 高海拔低氧对肉鸡血液指标的影响 | 第74-75页 |
| 3.4 高海拔低氧对肉鸡胫骨指标的影响 | 第75-76页 |
| 3.5 高海拔低氧对肉鸡胫骨生长板血管分布的影响 | 第76-77页 |
| 3.6 高海拔低氧对肉鸡生长板HIF-1ɑ、VEGFA和VEGFR1基因表达的影响. | 第77-78页 |
| 3.7 高海拔低氧对肉鸡生长板HIF-1ɑ、VEGFA和VEGFR1蛋白水平的影响. | 第78-79页 |
| 3.8 高海拔低氧对肉鸡血清中VEGFA、VEGFR2和IL-8蛋白浓度的影响 | 第79-80页 |
| 3.9 胫骨血管分布与相关基因的相关性分析 | 第80页 |
| 4 讨论 | 第80-84页 |
| 第六章 HIF-1ɑ/VEGF/VEGFR信号通路在福美双诱导的TD肉鸡上的作用机制 | 第84-100页 |
| 1 研究背景 | 第84-85页 |
| 2 材料和方法 | 第85-89页 |
| 2.1 试验材料 | 第85-86页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第85页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第85-86页 |
| 2.1.3 主要试验试剂 | 第86页 |
| 2.2 试验方法 | 第86-89页 |
| 2.2.1 试验动物与分组处理 | 第86-87页 |
| 2.2.2 生长性能 | 第87页 |
| 2.2.3 血液指标 | 第87页 |
| 2.2.4 胫骨生长板形态学和病理学观察 | 第87-88页 |
| 2.2.5 肉鸡胫骨总RNA的提取及cDNA的合成 | 第88页 |
| 2.2.6 肉鸡发生TD时胫骨中HIF-1ɑ、VEGFA和VEFGFR1mRNA表达水平变化 | 第88页 |
| 2.2.7 肉鸡发生TD时胫骨中HIF-1ɑ、VEGFA和VEFGFR1蛋白水平变化 | 第88页 |
| 2.2.8 肉鸡发生TD时血清中VEGFA、VEGFR2和IL-8蛋白含量变化 | 第88页 |
| 2.2.9 数据统计及分析 | 第88-89页 |
| 3 试验结果 | 第89-97页 |
| 3.1 TD肉鸡临床表现和胫骨生长板形态观察 | 第89页 |
| 3.2 肉鸡发生TD时胫骨指标的变化 | 第89-90页 |
| 3.3 胫骨生长板组织病理学观察 | 第90-93页 |
| 3.4 福美双对肉鸡血液指标的影响 | 第93-94页 |
| 3.5 福美双对肉鸡胫骨的软骨细胞形态学的影响 | 第94-95页 |
| 3.6 福美双对肉鸡胫骨HIF-1α、VEGFA及其受体基因表达的影响 | 第95页 |
| 3.7 福美双对肉鸡胫骨HIF-1α、VEGFA及其受体蛋白表达的影响 | 第95-96页 |
| 3.8 福美双对肉鸡血清中VEGFA、VEGFR2和IL-8蛋白含量的影响 | 第96-97页 |
| 3.9 胫骨血管分布与相关基因的相关性分析 | 第97页 |
| 4 讨论 | 第97-100页 |
| 第七章 VEGF/FGF/Ang-1/PDGF-BB及其受体在TD肉鸡胫骨血管形成过程中的作用机制 | 第100-116页 |
| 1 研究背景 | 第100-101页 |
| 2 材料和方法 | 第101-104页 |
| 2.1 试验材料 | 第101-103页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第101页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第101-102页 |
| 2.1.3 主要试验试剂 | 第102-103页 |
| 2.2 试验方法 | 第103-104页 |
| 2.2.1 试验动物与分组处理 | 第103页 |
| 2.2.2 肉鸡胫骨总RNA的提取及cDNA的合成 | 第103-104页 |
| 2.2.3 肉鸡发生TD时胫骨中调控血管生成相关基因表达水平的变化 | 第104页 |
| 2.2.4 肉鸡发生TD时胫骨中调控血管生成相关蛋白水平的变化 | 第104页 |
| 2.2.5 肉鸡发生TD时血清中调控血管生成相关蛋白含量的变化 | 第104页 |
| 2.2.6 数据统计及分析 | 第104页 |
| 3 试验结果 | 第104-112页 |
| 3.1 肉鸡发生TD时血管发生过程中胚层分化相关调控基因的表达 | 第104-105页 |
| 3.2 肉鸡发生TD时血管发生过程中胚层分化相关调控蛋白的表达 | 第105-106页 |
| 3.3 TD肉鸡血清中促进血管岛形成相关蛋白含量的变化 | 第106-107页 |
| 3.4 TD肉鸡胫骨中调控血管岛成熟的相关基因表达 | 第107-108页 |
| 3.5 TD肉鸡血清中调控血管岛成熟的相关蛋白含量的变化 | 第108-109页 |
| 3.6 TD肉鸡胫骨上调控血管增殖相关基因的表达 | 第109-110页 |
| 3.7 TD肉鸡胫骨上调控血管增殖相关蛋白的表达 | 第110-111页 |
| 3.8 TD肉鸡胫骨上调控血管成熟相关基因的表达 | 第111页 |
| 3.9 TD肉鸡血清中调控血管成熟相关蛋白含量的变化 | 第111-112页 |
| 4 讨论 | 第112-116页 |
| 第八章 RANKL/OPG信号通路在TD肉鸡胫骨生长上的作用机制 | 第116-131页 |
| 1 研究背景 | 第116-117页 |
| 2 材料和方法 | 第117-119页 |
| 2.1 试验材料 | 第117-118页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第117页 |
| 2.1.2 主要的仪器设备 | 第117页 |
| 2.1.3 主要的实验试剂 | 第117-118页 |
| 2.2 试验方法 | 第118-119页 |
| 2.2.1 试验动物与分组处理 | 第118页 |
| 2.2.2 肉鸡体重和胫骨相关指标测量 | 第118页 |
| 2.2.3 胫骨的形态学和组织病理观察 | 第118页 |
| 2.2.4 生化指标检测 | 第118页 |
| 2.2.5 肉鸡胫骨总RNA的提取及cDNA的合成 | 第118-119页 |
| 2.2.6 肉鸡发生TD时胫骨中OPG和RANKL基因的表达水平 | 第119页 |
| 2.2.7 肉鸡发生TD时血清中OPG和RANKL蛋白含量的水平 | 第119页 |
| 2.2.8 数据统计及分析 | 第119页 |
| 3 试验结果 | 第119-126页 |
| 3.1 TD肉鸡胫骨指标的变化及相互之间的关系 | 第119-121页 |
| 3.2 TD肉鸡胫骨生长板形态学的变化 | 第121-122页 |
| 3.3 TD肉鸡胫骨生长板血管分布的变化 | 第122页 |
| 3.4 TD肉鸡胫骨生长板肥大软骨细胞形态结构的变化 | 第122-123页 |
| 3.5 TD肉鸡血清生化指标的变化 | 第123-124页 |
| 3.6 TD肉鸡胫骨生长板上调控骨骼形成相关基因的表达 | 第124-125页 |
| 3.7 TD肉鸡血清中调控骨骼形成相关蛋白含量的变化 | 第125-126页 |
| 3.8 调控骨骼形成相关蛋白含量与胫骨生生长析血管分布和胫骨的生长之间的关系 | 第126页 |
| 4 讨论 | 第126-131页 |
| 第九章 结论 | 第131-132页 |
| 参考文献 | 第132-164页 |
| 致谢 | 第164-165页 |
| 附录 | 第165-167页 |
