摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第11-37页 |
1.1 毛细管电泳发展历程 | 第11页 |
1.2 毛细管电泳 | 第11-15页 |
1.2.1 毛细管电泳设备 | 第11-12页 |
1.2.2 毛细管电泳检测器 | 第12-13页 |
1.2.3 毛细管柱 | 第13-15页 |
1.3 毛细管电泳柱上预富集技术 | 第15-17页 |
1.3.1 场放大堆积 | 第15-16页 |
1.3.2 瞬态等速电泳 | 第16-17页 |
1.3.3 pH调制堆积 | 第17页 |
1.3.4 扫集及相关技术 | 第17页 |
1.4 毛细管电色谱 | 第17-21页 |
1.4.1 毛细管电色谱的分类 | 第18-19页 |
1.4.2 毛细管电色谱的基本原理 | 第19页 |
1.4.3 毛细管电色谱的实验条件选择 | 第19-20页 |
1.4.4 毛细管电色谱柱的制备 | 第20-21页 |
1.4.5 纳米乳胶修饰的毛细管柱 | 第21页 |
1.5 本论文的研究内容和研究意义 | 第21-22页 |
参考文献 | 第22-37页 |
第二章 基于二甲基乙醇胺胺化纳米乳胶修饰柱的多巴胺的毛细管电泳分析研究 | 第37-53页 |
2.1 前言 | 第37页 |
2.2 修饰柱的表征 | 第37-41页 |
2.2.1 粒径表征 | 第37-38页 |
2.2.2 红外表征 | 第38-39页 |
2.2.3 电渗流表征 | 第39-40页 |
2.2.4 对两种修饰柱进行稳定性考察 | 第40-41页 |
2.3 研究背景 | 第41-43页 |
2.4 实验部分 | 第43-44页 |
2.4.1 仪器与试剂 | 第43页 |
2.4.2 溶液配制 | 第43-44页 |
2.4.3 电泳条件 | 第44页 |
2.5 结果与讨论 | 第44-50页 |
2.5.1 缓冲液浓度及pH的选择 | 第44页 |
2.5.2 分离电压的选择 | 第44-45页 |
2.5.3 OT-CEC检测多巴胺 | 第45页 |
2.5.4 FASS-OT-CEC检测多巴胺 | 第45-50页 |
2.6 小结 | 第50页 |
参考文献 | 第50-53页 |
第三章 基于二甲基乙醇胺胺化纳米乳胶修饰柱的大环内酯类抗生素的毛细管电泳分析研究 | 第53-62页 |
3.1 前言 | 第53-54页 |
3.2 实验部分 | 第54-55页 |
3.2.1 仪器与试剂 | 第54页 |
3.2.2 溶液配制 | 第54-55页 |
3.2.3 电泳条件 | 第55页 |
3.3 结果与讨论 | 第55-60页 |
3.3.1 缓冲液的选择 | 第55页 |
3.3.2 有机添加剂的选择 | 第55-56页 |
3.3.3 分离电压的选择 | 第56页 |
3.3.4 进样条件的选择 | 第56-57页 |
3.3.5 最优化条件下三种抗生素分离情况 | 第57-58页 |
3.3.6 分析方法学 | 第58-59页 |
3.3.7 实际样品检测 | 第59-60页 |
3.4 结论 | 第60页 |
参考文献 | 第60-62页 |
第四章 基于三乙胺胺化纳米乳胶修饰柱的酱油和醋中苯甲酸、山梨酸的毛细管电泳分析研究 | 第62-71页 |
4.1 前言 | 第62页 |
4.2 实验部分 | 第62-63页 |
4.2.1 仪器与试剂 | 第62-63页 |
4.2.2 溶液配制 | 第63页 |
4.2.3 电泳条件 | 第63页 |
4.3 结果与讨论 | 第63-68页 |
4.3.1 OT-CEC优化条件 | 第63-65页 |
4.3.2 FASS-OT-CEC优化条件 | 第65-66页 |
4.3.3 分析方法学 | 第66-67页 |
4.3.4 实际样品检测 | 第67-68页 |
4.4 结论 | 第68页 |
参考文献 | 第68-71页 |
发表论文 | 第71-72页 |
致谢 | 第72页 |