| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-23页 |
| 1.1 凉薯的简介 | 第13页 |
| 1.2 凉薯制品的开发及应用 | 第13-14页 |
| 1.2.1 凉薯制品的开发 | 第13-14页 |
| 1.3 多糖的应用 | 第14-15页 |
| 1.4 多糖的提取方法 | 第15-16页 |
| 1.4.1 热水浸提法 | 第15页 |
| 1.4.2 稀碱浸提法 | 第15页 |
| 1.4.3 酶解提取法 | 第15-16页 |
| 1.4.4 超声波辅助提取法 | 第16页 |
| 1.4.5 微波辅助提取法 | 第16页 |
| 1.4.6 超临界流体辅助提取法 | 第16页 |
| 1.5 多糖的降血糖作用研究 | 第16-19页 |
| 1.5.1 灵芝多糖 | 第16-17页 |
| 1.5.2 黄芪多糖 | 第17页 |
| 1.5.3 枸杞多糖 | 第17-18页 |
| 1.5.4 南瓜多糖 | 第18页 |
| 1.5.5 马齿苋多糖 | 第18-19页 |
| 1.5.6 仙人掌多糖 | 第19页 |
| 1.6 糖尿病的研究现状 | 第19-22页 |
| 1.6.1 糖尿病的介绍 | 第20-22页 |
| 1.7 研究的目的、意义及主要内容 | 第22-23页 |
| 1.7.1 研究的目的和意义 | 第22页 |
| 1.7.2 主要研究内容 | 第22-23页 |
| 第二章 凉薯多糖的制备及理化性质分析 | 第23-33页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验材料与试剂 | 第23页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第23页 |
| 2.3 实验仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2.4 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.4.1 凉薯粗多糖的制备 | 第24-25页 |
| 2.4.2 凉薯多糖理化性质 | 第25-27页 |
| 2.4.3 凉薯多糖清除羟自由基活性测定 | 第27-28页 |
| 2.4.4 凉薯多糖清除ABTS~+自由基活性测定 | 第28页 |
| 2.5 统计与分析 | 第28页 |
| 2.6 结果与讨论 | 第28-32页 |
| 2.6.1 凉薯多糖的提取条件及提取率 | 第28-29页 |
| 2.6.2 凉薯多糖的单糖组成及分子量 | 第29-31页 |
| 2.6.3 凉薯多糖的体外抗氧化活性分析 | 第31-32页 |
| 2.7 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 凉薯多糖的体内降血糖作用 | 第33-49页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料与试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第33页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第33-34页 |
| 3.3 主要仪器与设备 | 第34页 |
| 3.4 实验方法 | 第34-40页 |
| 3.4.1 模型建立和动物分组 | 第34-35页 |
| 3.4.2 血清和组织样品的采集及脏器指数的测定 | 第35页 |
| 3.4.3 小鼠空腹血糖值的测定 | 第35-36页 |
| 3.4.4 小鼠血清生理指标的测定 | 第36页 |
| 3.4.5 小鼠肝脏组织各生理指标的测定 | 第36-40页 |
| 3.5 统计与分析 | 第40页 |
| 3.6 结果与讨论 | 第40-48页 |
| 3.6.1 小鼠体征的变化 | 第40页 |
| 3.6.2 凉薯多糖对小鼠摄食和饮水的影响 | 第40-42页 |
| 3.6.3 凉薯多糖对小鼠体重和脏器指数的影响 | 第42-44页 |
| 3.6.4 凉薯多糖对小鼠血糖的影响 | 第44-45页 |
| 3.6.5 凉薯多糖对小鼠血清指标的影响 | 第45-46页 |
| 3.6.6 凉薯多糖对小鼠肝脏组织的影响 | 第46-48页 |
| 3.7 本章小结 | 第48-49页 |
| 第四章 凉薯多糖对糖尿病小鼠组织形态的影响 | 第49-61页 |
| 4.1 引言 | 第49页 |
| 4.2 实验材料与试剂 | 第49页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第49页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第49页 |
| 4.3 主要仪器与设备 | 第49-50页 |
| 4.4 实验方法 | 第50-53页 |
| 4.4.1 动物模型的建立 | 第50页 |
| 4.4.2 组织样品的采集 | 第50页 |
| 4.4.3 主要试剂的配制 | 第50-51页 |
| 4.4.4 石蜡切片的制备 | 第51页 |
| 4.4.5 肝脏、肾脏和胰腺组织HE染色 | 第51-52页 |
| 4.4.6 肾脏组织PAS染色 | 第52页 |
| 4.4.7 肾脏组织TGF-β1免疫组化染色 | 第52-53页 |
| 4.5 数据处理与分析 | 第53页 |
| 4.6 结果与讨论 | 第53-60页 |
| 4.6.1 凉薯多糖对小鼠肝脏组织形态的影响 | 第53-54页 |
| 4.6.2 凉薯多糖对小鼠肾脏组织形态的影响 | 第54-55页 |
| 4.6.3 凉薯多糖对小鼠胰腺组织形态的影响 | 第55-56页 |
| 4.6.4 凉薯多糖对小鼠系膜基质指数的影响 | 第56-58页 |
| 4.6.5 凉薯多糖对小鼠肾脏组织TGF-β1的影响 | 第58-60页 |
| 4.7 本章小结 | 第60-61页 |
| 第五章 PEP95的纯化及结构分析 | 第61-69页 |
| 5.1 引言 | 第61页 |
| 5.2 实验材料与试剂 | 第61页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第61页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第61页 |
| 5.3 主要仪器和设备 | 第61-62页 |
| 5.4 实验方法 | 第62-63页 |
| 5.4.1 PEP95的离子交换柱层析 | 第62页 |
| 5.4.2 PEP95的凝胶柱层析 | 第62-63页 |
| 5.4.3 紫外扫描图谱 | 第63页 |
| 5.4.4 红外光谱 | 第63页 |
| 5.4.5 核磁共振 | 第63页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第63-68页 |
| 5.5.1 凉薯多糖PEP95组分的纯化 | 第63-64页 |
| 5.5.2 紫外扫描图谱分析 | 第64页 |
| 5.5.3 红外光谱分析 | 第64-65页 |
| 5.5.4 核磁共振分析 | 第65-68页 |
| 5.6 本章小结 | 第68-69页 |
| 第六章 总结与展望 | 第69-71页 |
| 6.1 全文总结 | 第69-70页 |
| 6.2 创新点 | 第70页 |
| 6.3 展望 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-83页 |
| 附录 | 第83页 |