| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 靶向纳米药物载体 | 第13-14页 |
| 1.3 纳米材料的安全性研究 | 第14-15页 |
| 1.4 纳米材料的表征方法 | 第15页 |
| 1.5 免疫分析方法 | 第15页 |
| 1.6 课题研究设想 | 第15-17页 |
| 参考文献 | 第17-22页 |
| 第二章 SiO_2-FO抗原抗体的制备与表征 | 第22-36页 |
| 2.1 引言 | 第22-23页 |
| 2.1.1 免疫的基本概念 | 第22-23页 |
| 2.1.1.1 抗原 | 第22页 |
| 2.1.1.2 抗体 | 第22-23页 |
| 2.2 试剂与仪器 | 第23-25页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第24页 |
| 2.2.3 实验溶液的配制 | 第24-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-29页 |
| 2.3.1 SiO_2-FO半抗原的制备 | 第25-26页 |
| 2.3.2 SiO_2-FO全抗原的制备 | 第26页 |
| 2.3.3 抗SiO_2-FO抗体的制备 | 第26-29页 |
| 2.3.3.1 佐剂的制备 | 第26-27页 |
| 2.3.3.2 动物的免疫 | 第27页 |
| 2.3.3.3 抗血清效价的测定 | 第27-28页 |
| 2.3.3.4 抗血清的分离与纯化 | 第28-29页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第29-32页 |
| 2.4.1 SiO_2-FO半抗原及其全抗原的表征 | 第29-31页 |
| 2.4.2 抗血清的效价测定与筛选 | 第31页 |
| 2.4.3 抗体蛋白质浓度的测定 | 第31-32页 |
| 2.5 小结 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 第三章 抗原包被酶联免疫间接法定量分析SiO_2-FO | 第36-53页 |
| 3.1 引言 | 第36-37页 |
| 3.2 试剂与仪器 | 第37-39页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第37-38页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第38页 |
| 3.2.3 实验溶液的配制 | 第38-39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-42页 |
| 3.3.1 酶联免疫间接法的条件优化 | 第39-41页 |
| 3.3.1.1 包被抗原与抗体反应浓度的优化 | 第39页 |
| 3.3.1.2 抗原抗体反应时间的优化 | 第39页 |
| 3.3.1.3 封闭剂浓度的优化 | 第39-40页 |
| 3.3.1.4 HRP-羊抗兔IgG稀释比的优化 | 第40页 |
| 3.3.1.5 HRP-羊抗兔IgG反应时间的优化 | 第40页 |
| 3.3.1.6 缓冲液PBS离子强度和pH的优化 | 第40-41页 |
| 3.3.2 ic-ELISA标准曲线的建立 | 第41-42页 |
| 3.3.3 交叉反应率 | 第42页 |
| 3.3.4 样品测定 | 第42页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第42-49页 |
| 3.4.1 包被抗原与抗体反应浓度的优化 | 第42-43页 |
| 3.4.2 抗原抗体反应时间的优化 | 第43-44页 |
| 3.4.3 封闭剂浓度的优化 | 第44-45页 |
| 3.4.4 HRP-羊抗兔IgG稀释比的优化 | 第45页 |
| 3.4.5 HRP-羊抗兔IgG反应时间的优化 | 第45-46页 |
| 3.4.6 缓冲液PBS离子强度和pH的优化 | 第46-47页 |
| 3.4.7 灵敏度 | 第47-48页 |
| 3.4.8 方法的特异性 | 第48页 |
| 3.4.9 准确度 | 第48-49页 |
| 3.5 小结 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
| 第四章 FITC标记荧光免疫法测定SiO_2-FO | 第53-71页 |
| 4.1 引言 | 第53-54页 |
| 4.2 试剂与仪器 | 第54-56页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第54-55页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第55页 |
| 4.2.3 实验溶液的配制 | 第55-56页 |
| 4.3 实验方法 | 第56-60页 |
| 4.3.1 FITC标记抗体的制备、纯化及性能考察 | 第56-57页 |
| 4.3.1.1 FITC标记抗体的制备 | 第56页 |
| 4.3.1.2 FITC标记抗体的纯化 | 第56-57页 |
| 4.3.1.3 FITC标记抗体的性能考察 | 第57页 |
| 4.3.2 FITC标记荧光免疫法反应条件的优化 | 第57-59页 |
| 4.3.2.1 包被抗原与FITC标记抗体反应浓度的优化 | 第57-58页 |
| 4.3.2.2 抗原抗体反应时间的优化 | 第58页 |
| 4.3.2.3 封闭剂浓度的优化 | 第58页 |
| 4.3.2.4 缓冲液PBS离子强度和pH的优化 | 第58-59页 |
| 4.3.3 FITC-(dc-FIA)标准曲线的建立 | 第59页 |
| 4.3.4 交叉反应率 | 第59-60页 |
| 4.3.5 样品测定 | 第60页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第60-66页 |
| 4.4.1 FITC标记抗体的质量鉴定 | 第60-62页 |
| 4.4.2 包被抗原与FITC标记抗体反应浓度的优化 | 第62页 |
| 4.4.3 抗原抗体反应时间的优化 | 第62-63页 |
| 4.4.4 封闭剂浓度的优化 | 第63-64页 |
| 4.4.5 缓冲液PBS离子强度和pH的优化 | 第64-65页 |
| 4.4.6 灵敏度 | 第65页 |
| 4.4.7 方法的特异性 | 第65-66页 |
| 4.4.8 准确度 | 第66页 |
| 4.5 小结 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-71页 |
| 第五章 包裹BODIPY聚合物纳米探针标记荧光免疫法测定SiO_2-FO | 第71-91页 |
| 5.1 引言 | 第71-72页 |
| 5.2 试剂与仪器 | 第72-74页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第72-73页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第73-74页 |
| 5.2.3 实验溶液的配制 | 第74页 |
| 5.3 实验方法 | 第74-79页 |
| 5.3.1 包裹BODIPY聚合物纳米探针(BPFNP)的制备 | 第74-75页 |
| 5.3.1.1 BODIPY的制备 | 第74-75页 |
| 5.3.1.2 BPFNP的制备 | 第75页 |
| 5.3.2 BPFNP标记抗体的制备 | 第75-76页 |
| 5.3.3 BPFNP标记荧光免疫法反应条件的优化 | 第76-77页 |
| 5.3.3.1 包被抗原与BPFNP标记抗体反应浓度的优化 | 第76页 |
| 5.3.3.2 抗原抗体反应时间的优化 | 第76-77页 |
| 5.3.3.3 封闭剂浓度的优化 | 第77页 |
| 5.3.3.4 缓冲液PBS离子强度和pH的优化 | 第77页 |
| 5.3.4 BPFNP-(dc-FIA)标准曲线的建立 | 第77-78页 |
| 5.3.5 交叉反应率 | 第78页 |
| 5.3.6 样品测定 | 第78-79页 |
| 5.4 实验结果与讨论 | 第79-87页 |
| 5.4.1 BPFNP的表征 | 第79-81页 |
| 5.4.2 BPFNP表面抗体密度的优化 | 第81页 |
| 5.4.3 包被抗原与BPFNP标记抗体反应浓度的优化 | 第81-82页 |
| 5.4.4 抗原抗体反应时间的优化 | 第82-83页 |
| 5.4.5 封闭剂浓度的优化 | 第83-84页 |
| 5.4.6 缓冲液PBS离子强度和pH的优化 | 第84-85页 |
| 5.4.7 灵敏度 | 第85-86页 |
| 5.4.8 方法的特异性 | 第86页 |
| 5.4.9 准确度 | 第86-87页 |
| 5.5 小结 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-91页 |
| 结论与展望 | 第91-92页 |
| 科研成果和获奖情况 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
