摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
1 绪论 | 第11-23页 |
1.1 果胶简介 | 第11-14页 |
1.1.1 果胶的结构与性质 | 第11-13页 |
1.1.2 果胶用于药物载体领域的研究现状 | 第13-14页 |
1.2 生物素与靶向配体 | 第14-17页 |
1.2.1 靶向配体 | 第14页 |
1.2.2 生物素简介 | 第14-15页 |
1.2.3 生物素作为靶向配体的研究 | 第15-17页 |
1.3 纳米粒载药体系 | 第17-21页 |
1.3.1 多糖纳米粒载药研究 | 第17-20页 |
1.3.2 影响纳米粒结构与性质的因素 | 第20-21页 |
1.4 本论文的设计思路 | 第21-23页 |
2 生物素化果胶(Bio-PEC)衍生物的合成及表征 | 第23-30页 |
2.1 引言 | 第23页 |
2.2 试剂及仪器 | 第23-25页 |
2.2.1 材料及试剂 | 第23-24页 |
2.2.2 仪器设备 | 第24-25页 |
2.3 实验方法 | 第25-26页 |
2.3.1 Bio-PEC的合成 | 第25-26页 |
2.3.2 Bio-PEC的FT-IR表征 | 第26页 |
2.3.3 Bio-PEC取代度的测定 | 第26页 |
2.4 结果与讨论 | 第26-29页 |
2.4.1 Bio-PEC的合成工艺探究 | 第26-27页 |
2.4.2 Bio-PEC中生物素的取代度测定 | 第27-28页 |
2.4.3 Bio-PEC红外光谱分析 | 第28页 |
2.4.4 Bio-PEC的XRD测试 | 第28-29页 |
2.5 本章小结 | 第29-30页 |
3 生物素化果胶多糖纳米粒的制备、表征及影响因素考察 | 第30-39页 |
3.1 前言 | 第30-31页 |
3.2 试剂及仪器 | 第31-32页 |
3.2.1 实验所需试剂 | 第31页 |
3.2.2 仪器设备 | 第31-32页 |
3.3 实验方法 | 第32-33页 |
3.3.1 生物素化果胶纳米粒(Bio-PEC-NPs)的制备 | 第32页 |
3.3.2 自聚集纳米粒的形态观察 | 第32页 |
3.3.3 粒径分布及Zeta电位的测定 | 第32页 |
3.3.4 多种因素对纳米颗粒制备的影响 | 第32-33页 |
3.3.5 后处理对纳米颗粒的影响 | 第33页 |
3.3.6 纳米悬液稳定性研究 | 第33页 |
3.4 结果与讨论 | 第33-38页 |
3.4.1 制备方法的选择 | 第33-34页 |
3.4.2 Bio-PEC纳米粒的形态 | 第34页 |
3.4.3 Bio-PEC纳米粒的粒径分布及Zeta电位 | 第34-36页 |
3.4.4 纳米颗粒稳定性研究 | 第36页 |
3.4.5 制备条件对纳米颗粒形成的影响 | 第36-38页 |
3.5 本章小结 | 第38-39页 |
4 负载阿霉素药物的生物素化果胶纳米粒的制备、表征及体外释放研究 | 第39-52页 |
4.1 引言 | 第39-40页 |
4.2 试剂及仪器 | 第40-41页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第40页 |
4.2.2 仪器设备 | 第40-41页 |
4.3 实验方法 | 第41-43页 |
4.3.1 载药纳米粒(DOX/Bio-PEC-NPs)的制备 | 第41页 |
4.3.2 DOX/Bio-PEC-NPs载药量及包封率的测定 | 第41-42页 |
4.3.3 DOX/Bio-PEC-NPs的荧光电镜观察 | 第42页 |
4.3.4 DOX/Bio-PEC-NPs的粒径分布及Zeta电位测定 | 第42页 |
4.3.5 DOX/Bio-PEC-NPs的XRD粉末衍射分析 | 第42页 |
4.3.6 DOX/Bio-PEC-NPs的体外释放 | 第42-43页 |
4.4 结果与讨论 | 第43-51页 |
4.4.1 阿霉素标准曲线的建立 | 第43-46页 |
4.4.2 Bio-PEC-NPs载药性能的研究 | 第46-47页 |
4.4.3 DOX在Bio-PEC-NPs中的存在形式及载药纳米粒的表征 | 第47-49页 |
4.4.4 载药纳米粒体外释药实验 | 第49-51页 |
4.5 结论 | 第51-52页 |
5 结论与展望 | 第52-54页 |
5.1 结论 | 第52-53页 |
5.2 展望 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-62页 |
攻读硕士期间发表的论文及所取得的研究成果 | 第62-63页 |
致谢 | 第63-64页 |