| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文缩写一览表 | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-27页 |
| 1.1 果蝇胚胎研究概述 | 第12-14页 |
| 1.1.1 果蝇及其胚胎作为模式生物的优势 | 第12-13页 |
| 1.1.2 果蝇胚胎发育过程 | 第13页 |
| 1.1.3 果蝇胚胎石蜡切片研究背景 | 第13-14页 |
| 1.2 CAMRs蛋白概述 | 第14-15页 |
| 1.2.1 CAMRs研究背景 | 第14-15页 |
| 1.2.2 CAMRs与疾病 | 第15页 |
| 1.3 CAMRs相关细胞外基质蛋白概述 | 第15-25页 |
| 1.3.1 胶原蛋白 | 第16-17页 |
| 1.3.2 腓骨蛋白 | 第17-19页 |
| 1.3.3 整合素蛋白 | 第19-22页 |
| 1.3.4 纤维粘连蛋白 | 第22-24页 |
| 1.3.5 ECM与果蝇胚胎发育 | 第24-25页 |
| 1.4 CAMRs和ECM的相关性 | 第25页 |
| 1.5 选题依据 | 第25-27页 |
| 第2章 果蝇胚胎石蜡切片制作方法的改良 | 第27-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第27页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第27页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.2.1 果蝇的培养 | 第27-28页 |
| 2.2.2 果蝇胚胎的收集 | 第28页 |
| 2.2.3 果蝇胚胎组织学样品制备和染色 | 第28-30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-35页 |
| 2.3.1 各发育时期的胚胎数目占收集胚胎数目的比例 | 第30页 |
| 2.3.2 渗透化处理对胚胎石蜡包埋的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.3 三种聚集方法HE染色结果比较分析 | 第31-32页 |
| 2.3.4 三种聚集方法PASM染色结果比较分析 | 第32-33页 |
| 2.3.5 以改良方法制备切片观察果蝇胚胎各发育时期的组织学形态 | 第33-35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-37页 |
| 2.4.1 旧卵防止措施对果蝇胚胎收集数量的影响 | 第35-36页 |
| 2.4.2 渗透化处理对果蝇胚胎石蜡包埋的影响 | 第36-37页 |
| 2.4.3 石蜡聚集法切片更能有效制备高质量胚胎组织学样品 | 第37页 |
| 2.4.4 利用改良方法制备胚胎石蜡切片高质量成功观察早期胚胎发育各时期形态变化 | 第37页 |
| 2.5 结论 | 第37-39页 |
| 第3章 CAMR1/2在果蝇早期胚胎发育中的表达定位 | 第39-59页 |
| 3.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-46页 |
| 3.2.1 胚胎组织蛋白样品制备和免疫印迹(Western Blot)方法 | 第39-40页 |
| 3.2.2 免疫组织化学染色 | 第40-41页 |
| 3.2.3 CAMR1/2基因表达检测 | 第41-43页 |
| 3.2.4 CAMR1/2基因克隆 | 第43-46页 |
| 3.3 结果与分析 | 第46-57页 |
| 3.3.1 CAMR1和CAMR2蛋白在果蝇早期胚胎发育中的蛋白表达水平 | 第46-48页 |
| 3.3.2 CAMR1和CAMR2在果蝇早期胚胎发育中的mRNA表达水平 | 第48-49页 |
| 3.3.3 CAMR1/2在果蝇早期胚胎发育各时期免疫组化定位分析 | 第49-57页 |
| 3.4 讨论 | 第57-58页 |
| 3.5 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 攻读硕士学位期间科研成果 | 第71页 |
