| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略语表 | 第16-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-42页 |
| 1.1 引言 | 第19-20页 |
| 1.2 抗体的结构与功能 | 第20-25页 |
| 1.2.1 人IgG结构与功能 | 第20-21页 |
| 1.2.2 人IgG亚型的结构与功能 | 第21-23页 |
| 1.2.3 人IgA和IgM的结构与功能 | 第23-24页 |
| 1.2.4 禽类IgY的结构与功能 | 第24-25页 |
| 1.3 抗体药物及其分离方法 | 第25-28页 |
| 1.3.1 抗体药物现状 | 第25-26页 |
| 1.3.2 抗体的分离纯化方法 | 第26-28页 |
| 1.4 混合模式层析 | 第28-35页 |
| 1.4.1 混合模式层析的原理 | 第29-30页 |
| 1.4.2 混合模式配基 | 第30-32页 |
| 1.4.3 混合模式层析的应用 | 第32-35页 |
| 1.5 蛋白质与介质相互作用研究 | 第35-38页 |
| 1.5.1 等温滴定量热法 | 第35-36页 |
| 1.5.2 核磁共振技术 | 第36-37页 |
| 1.5.3 表面等离子共振技术 | 第37页 |
| 1.5.4 原子力显微镜 | 第37-38页 |
| 1.6 定量构效关系分析 | 第38-40页 |
| 1.6.1 定量构效关系概述 | 第38页 |
| 1.6.2 QSAR方法基本流程 | 第38-39页 |
| 1.6.3 QSAR应用 | 第39-40页 |
| 1.7 本文研究思路 | 第40-42页 |
| 第二章 哺乳动物IgG及IgG不同亚型的吸附性能 | 第42-56页 |
| 2.1 引言 | 第42-43页 |
| 2.2 材料和方法 | 第43-44页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第43-44页 |
| 2.2.2 抗体在层析柱中的吸附行为 | 第44页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第44-54页 |
| 2.3.1 不同哺乳动物IgG在层析柱上的吸附行为 | 第46-51页 |
| 2.3.2 人IgG不同亚型在层析柱上的吸附行为 | 第51-54页 |
| 2.4 本章小结 | 第54-56页 |
| 第三章 禽类IgY的吸附性能及分离应用 | 第56-70页 |
| 3.1 引言 | 第56-57页 |
| 3.2 材料和方法 | 第57-59页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第57页 |
| 3.2.2 IgY在层析柱中的吸附行为 | 第57页 |
| 3.2.3 鸡血浆料液的制备 | 第57页 |
| 3.2.4 层析过程优化 | 第57-58页 |
| 3.2.5 SDS-PAGE蛋白分析 | 第58页 |
| 3.2.6 SEC-HPLC分析 | 第58页 |
| 3.2.7 IgY生物活性分析 | 第58-59页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第59-69页 |
| 3.3.1 IgY在层析柱中的吸附性能比较 | 第59-62页 |
| 3.3.2 混合模式层析分离IgY | 第62-69页 |
| 3.3.3 IgY生物学活性分析 | 第69页 |
| 3.4 本章小结 | 第69-70页 |
| 第四章 人IgM、IgA和IgG的吸附选择性及IgM分离 | 第70-88页 |
| 4.1 引言 | 第70-71页 |
| 4.2 材料和方法 | 第71-74页 |
| 4.2.1 主要试剂与仪器 | 第71-72页 |
| 4.2.2 MMC介质对IgM和IgA的吸附 | 第72页 |
| 4.2.3 IgM和IgA的洗脱优化 | 第72-73页 |
| 4.2.4 细胞培养液中分离IgM单抗 | 第73页 |
| 4.2.5 人血清中分离IgM | 第73-74页 |
| 4.2.6 SEC-HPLC分析 | 第74页 |
| 4.2.7 IgM生物活性分析 | 第74页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第74-87页 |
| 4.3.1 IgM与IgA在层析柱上的吸附行为 | 第74-77页 |
| 4.3.2 蛋白吸附选择性比较 | 第77-79页 |
| 4.3.3 IgM洗脱条件优化 | 第79-81页 |
| 4.3.4 杂交瘤细胞培养液中分离mIgM | 第81-83页 |
| 4.3.5 人血清中IgM的分离 | 第83-87页 |
| 4.4 本章小结 | 第87-88页 |
| 第五章 人IgG及其片段Fab/Fc的吸附选择性和分离 | 第88-104页 |
| 5.1 引言 | 第88-89页 |
| 5.2 材料和方法 | 第89-91页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第89页 |
| 5.2.2 抗体在层析柱中的吸附行为 | 第89-90页 |
| 5.2.3 ITC分析 | 第90页 |
| 5.2.4 IgG和Fc的分离 | 第90页 |
| 5.2.5 SDS-PAGE蛋白分析 | 第90页 |
| 5.2.6 SEC-HPLC分析 | 第90-91页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第91-102页 |
| 5.3.1 MMC介质对IgG及其片段Fab/Fc的吸附 | 第91-94页 |
| 5.3.2 MMC介质对IgG及其片段的选择性比较 | 第94-96页 |
| 5.3.3 配基与蛋白结合的热力学分析 | 第96-98页 |
| 5.3.4 IgG与Fc的分离过程优化 | 第98-102页 |
| 5.4 本章小结 | 第102-104页 |
| 第六章 混合模式介质吸附抗体的定量构效关系分析 | 第104-127页 |
| 6.1 引言 | 第104-105页 |
| 6.2 分子模型和计算方法 | 第105-110页 |
| 6.2.1 分子模型 | 第105-107页 |
| 6.2.2 分子描述符计算方法 | 第107-108页 |
| 6.2.3 描述符筛选 | 第108-109页 |
| 6.2.4 QSAR模型建立 | 第109页 |
| 6.2.5 QSAR模型的评价 | 第109-110页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第110-126页 |
| 6.3.1 MEP HyperCel的QSAR模型 | 第110-115页 |
| 6.3.2 MMI-4FF吸附抗体的QSAR分析 | 第115-118页 |
| 6.3.3 ABI-4FF吸附抗体的QSAR分析 | 第118-121页 |
| 6.3.4 W-ABI-4FF吸附抗体的QSAR分析 | 第121-122页 |
| 6.3.5 不同混合模式介质的QSAR分析 | 第122-126页 |
| 6.4 本章小结 | 第126-127页 |
| 第七章 结论和展望 | 第127-130页 |
| 7.1 结论 | 第127-129页 |
| 7.2 展望 | 第129-130页 |
| 参考文献 | 第130-143页 |
| 攻读博士学位期间的研究成果 | 第143-144页 |
| 作者简介 | 第144页 |
