| 符号说明 | 第4-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-17页 |
| 1.1 食药用真菌多糖的研究概况 | 第12-14页 |
| 1.1.1 食药用真菌及多糖的研究价值 | 第12页 |
| 1.1.2 食药用真菌多糖的生物学功能 | 第12-13页 |
| 1.1.3 食药用真菌多糖的结构特征 | 第13-14页 |
| 1.1.4 食药用真菌多糖的开发利用 | 第14页 |
| 1.2 微量元素锌 | 第14-15页 |
| 1.3 灰树花 | 第15-16页 |
| 1.3.1 灰树花的生物学特性 | 第15-16页 |
| 1.3.2 灰树花的生物学功能 | 第16页 |
| 1.4 本课题的目的意义 | 第16-17页 |
| 2 材料和方法 | 第17-28页 |
| 2.1 供试菌种 | 第17页 |
| 2.2 培养基 | 第17页 |
| 2.2.1 PDA固体种子培养基 | 第17页 |
| 2.2.2 PDA液体培养基 | 第17页 |
| 2.3 主要仪器设备 | 第17-18页 |
| 2.4 主要试剂 | 第18页 |
| 2.5 试验方法 | 第18-28页 |
| 2.5.1 灰树花的种子活化和液体培养 | 第18-19页 |
| 2.5.2 菌丝体生物量的测定 | 第19页 |
| 2.5.3 锌浓度的确定 | 第19页 |
| 2.5.4 原子吸收法测锌含量 | 第19页 |
| 2.5.5 灰树花多糖的提取及含量测定 | 第19-21页 |
| 2.5.6 灰树花GEPS与GIZPS的提取优化 | 第21-24页 |
| 2.5.7 灰树花GEPS的分离纯化 | 第24页 |
| 2.5.8 多糖的体外抗氧化 | 第24-25页 |
| 2.5.9 多糖的体内抗氧化 | 第25-27页 |
| 2.5.10 单糖组成分析 | 第27-28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-56页 |
| 3.1 菌丝体生物量与锌含量 | 第28页 |
| 3.2 灰树花GEPS和GIZPS的提取优化 | 第28-39页 |
| 3.2.1 灰树花GEPS的提取优化 | 第28-33页 |
| 3.2.2 灰树花GIZPS的提取优化 | 第33-39页 |
| 3.3 灰树花胞外多糖(GEPS)分离纯化 | 第39-40页 |
| 3.4 灰树花胞外多糖与组分的体外抗氧化 | 第40-43页 |
| 3.4.1 对羟基自由基-OH清除作用 | 第40-41页 |
| 3.4.2 对DPPH自由基的清除作用 | 第41-42页 |
| 3.4.3 还原力测定 | 第42-43页 |
| 3.5 灰树花菌丝体多糖(GIPS)与富锌菌丝体多糖(GIZPS)的体外抗氧化活性 | 第43-46页 |
| 3.5.1 GIPS与GIZPS对羟基自由基-OH的清除作用 | 第43-44页 |
| 3.5.2 GIPS与GIZPS对DPPH自由基的清除作用 | 第44-45页 |
| 3.5.3 GIPS与GIZPS还原力的测定 | 第45-46页 |
| 3.6 GEPS的体内抗氧化活性 | 第46-48页 |
| 3.6.1 GEPS对小鼠肝脏总抗氧化能力(T-AOC)的影响 | 第46页 |
| 3.6.2 GEPS对小鼠肾脏中丙二醛(MDA)含量的影响 | 第46-47页 |
| 3.6.3 GEPS对小鼠血液中SOD活性的影响 | 第47-48页 |
| 3.7 GIPS与GIZPS的体内抗氧化活性 | 第48-53页 |
| 3.7.1 GIPS与GIZPS对小鼠肝脏中T-AOC含量的影响 | 第48-49页 |
| 3.7.2 GIPS与GIZPS对小鼠肾脏中MDA含量的影响 | 第49-51页 |
| 3.7.3 GIPS与GIZPS对小鼠血液中SOD活性的影响 | 第51-53页 |
| 3.8 GEPS、GIPS、GIZPS的气相色谱结果 | 第53-56页 |
| 4 讨论 | 第56-58页 |
| 5 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第65页 |
