摘要 | 第10-13页 |
Abstract | 第13-15页 |
前言 | 第16-21页 |
第一部分 利拉鲁肽对糖尿病模型大鼠血糖、血脂等生化指标的影响 | 第21-33页 |
研究材料(资料、内容)与方法 | 第21-24页 |
一 研究内容 | 第21页 |
二 实验对象和方法 | 第21-24页 |
1 实验动物与饲料 | 第21页 |
2 主要实验药品 | 第21页 |
3 实验仪器与试剂 | 第21-22页 |
4 方法 | 第22-23页 |
4.1 造模与分组 | 第22页 |
4.2 一般情况及样本收集 | 第22-23页 |
4.3 指标测定 | 第23页 |
5 数据处理 | 第23-24页 |
三 结果 | 第24-31页 |
1 一般状况观察和体重变化 | 第24-25页 |
2 利拉鲁肽对糖尿病模型大鼠FBG的改善 | 第25-26页 |
3 利拉鲁肽组及其他各组大鼠血生化指标的测定结果 | 第26-27页 |
4 利拉鲁肽及其他各组大鼠糖化血红蛋白(HbAlc)含量的变化 | 第27-28页 |
5 各组大鼠肾脏重量指数的变化 | 第28-29页 |
6 各组大鼠血肌酐和尿素氮的测定结果 | 第29-31页 |
讨论 | 第31-33页 |
第二部分 利拉鲁肽对糖尿病大鼠肾脏纤维化的影响 | 第33-51页 |
研究材料(资料、内容)与方法 | 第33-42页 |
一 研究内容 | 第33页 |
1.观察探讨利拉鲁肽对大鼠糖尿病模型肾脏病理学改变的影响 | 第33页 |
2.推测利拉鲁肽对糖尿病模型大鼠肾脏纤维化的可能影响因素 | 第33页 |
二 主要仪器与试剂 | 第33-34页 |
三 实验方法 | 第34-42页 |
1 标本处理 | 第34页 |
2 肾脏的病理学及组织学观察 | 第34-41页 |
2.1 大鼠肾脏组织的石蜡包埋及切片 | 第34-35页 |
2.2 HE染色 | 第35页 |
2.3 Masson染色 | 第35-36页 |
2.4 计算肾脏组织胶原容积分数(CVF,%) | 第36页 |
2.5 Westernblot法检测大鼠肾脏组织中P38MAPK、TGF-β_1和MCP-1蛋白的表达水平 | 第36-38页 |
2.6 实时定量PCR法检测大鼠肾脏组织中P38MAPK、TGF-β_1和MCP-1mRNA的表达 | 第38-41页 |
3 统计学分析 | 第41-42页 |
四 结果 | 第42-48页 |
1 各组大鼠肾脏组织HE染色结果 | 第42页 |
2 各组大鼠肾脏组织Masson染色结果 | 第42-43页 |
3 大鼠肾脏组织胶原容积分数(CVF,%)测定结果 | 第43-44页 |
4 各组大鼠肾脏组织中P38MAPK、TGF-β_1和MCP-1蛋白表达含量的测定结果 | 第44-46页 |
5 各组大鼠肾脏组织中P38MAPK、TGF-β_1和MCP-1mRNA表达的测定结果 | 第46-48页 |
讨论 | 第48-51页 |
第三部分 利拉鲁肽对高糖诱导肾小管上皮细胞凋亡的影响 | 第51-63页 |
研究材料(资料、内容)与方法 | 第51-56页 |
一 研究内容 | 第51页 |
探讨利拉鲁肽对高糖诱导肾小管上皮细胞凋亡的影响 | 第51页 |
二 材料与方法 | 第51-56页 |
1 材料 | 第51-52页 |
1.1 细胞 | 第51页 |
1.2 主要药品与试剂 | 第51页 |
1.3 仪器 | 第51-52页 |
2 方法 | 第52-55页 |
2.1 溶液配制 | 第52页 |
2.2 细胞培养 | 第52-53页 |
2.3 细胞分组 | 第53-54页 |
2.4 CCK8检测药物效应 | 第54页 |
2.5 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第54页 |
2.6 Westernblot检测P38MAPK、MCP-1和TGF-β1蛋白表达水平 | 第54-55页 |
2.7 细胞增殖抑制率的计算 | 第55页 |
3 统计学方法 | 第55-56页 |
三 结果 | 第56-61页 |
1 梯度细胞选择结果 | 第56页 |
2 梯度葡萄糖浓度选择结果 | 第56-57页 |
3 梯度时间选择结果 | 第57-58页 |
4 CCK8检测药物效应结果 | 第58页 |
5 流式细胞技术检测结果 | 第58-59页 |
6 Westernblot检测结果 | 第59-61页 |
讨论 | 第61-63页 |
结论 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-73页 |
综述 | 第73-82页 |
参考文献 | 第78-82页 |
作者简介及读研期间主要科研成果 | 第82-83页 |
致谢 | 第83-84页 |