| 中英文缩略词对照表 | 第5-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一部分 LPS体外诱导损伤模型的构建及沙利度胺保护效应 | 第14-37页 |
| 1 研究材料 | 第14-15页 |
| 1.1 研究对象 | 第14页 |
| 1.2 实验材料 | 第14-15页 |
| 2 实验方法 | 第15-20页 |
| 2.1 人气静脉内皮细胞HUVEC的体外培养 | 第15-16页 |
| 2.2 MTT法 | 第16-17页 |
| 2.3 LPS最佳作用时间及浓度的确定 | 第17页 |
| 2.4 流式细胞术检测沙利度胺最佳预处理时间 | 第17-18页 |
| 2.5 TUNEL法 | 第18页 |
| 2.6 WesternBlot法 | 第18-20页 |
| 3 统计学处理 | 第20页 |
| 4 结果 | 第20-26页 |
| 4.1 LPS最佳作用时间及浓度的确定 | 第20-21页 |
| 4.2 沙利度胺无细胞毒性浓度范围的确定 | 第21-22页 |
| 4.3 沙利度胺最佳干预时间的确定 | 第22-23页 |
| 4.4 不同浓度沙利度胺保护作用的比较 | 第23-25页 |
| 4.5 WesternBlot法检测NF-κB下游P65以及p-P65的表达量 | 第25-26页 |
| 5 讨论 | 第26-30页 |
| 5.1 ROS与线粒体 | 第27-28页 |
| 5.2 构建炎症损伤模型及沙利度胺对于HUVEC的保护作用 | 第28-30页 |
| 6 小结 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-37页 |
| 第二部分 沙利度胺通过线粒体途径抗细胞损伤机制 | 第37-50页 |
| 1 研究材料 | 第37-38页 |
| 1.1 研究对象 | 第37页 |
| 1.2 实验材料 | 第37-38页 |
| 2 实验方法 | 第38-40页 |
| 2.1 JC-1检测线粒体膜电位 | 第38页 |
| 2.2 DHCF-DA探针检测ROS生成量 | 第38-39页 |
| 2.3 Q-PCR检测Bcl-2、Bax以及Hif-1α的表达量 | 第39-40页 |
| 3 统计学处理 | 第40-41页 |
| 4 结果 | 第41-45页 |
| 4.1 不同浓度沙利度胺预处理后ROS的产生量 | 第41页 |
| 4.2 不同浓度沙利度胺预处理后线粒体膜电位的改变 | 第41-42页 |
| 4.3 不同浓度沙利度胺预处理后Bax、Bcl2和Hif-1α的表达量 | 第42-45页 |
| 5 讨论 | 第45-48页 |
| 5.1 线粒体结构与功能 | 第45页 |
| 5.2 沙利度胺介导下HUVEC细胞内线粒体功能和结构的改变 | 第45-46页 |
| 5.3 氧化应激反应中ROS与HIF-1α之间的关系 | 第46-48页 |
| 6 小结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 综述 | 第51-64页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 作者简介及读研期间主要科研成果 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
