| 中文摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 1 实验材料 | 第13-17页 |
| 1.1 实验动物及饲养条件 | 第13页 |
| 1.1.1 实验动物选择 | 第13页 |
| 1.1.2 实验动物饲养条件 | 第13页 |
| 1.2 实验药物和给药方法 | 第13-14页 |
| 1.3 实验主要试剂、仪器及器材 | 第14-16页 |
| 1.3.1 主要试剂(详见表1) | 第14-15页 |
| 1.3.2 主要液体及配制方法(详见表2) | 第15-16页 |
| 1.3.3 主要仪器(详见表3) | 第16页 |
| 1.4 实验动物分组及给药 | 第16-17页 |
| 2 实验方法 | 第17-25页 |
| 2.1 模型制备 | 第17-19页 |
| 2.1.1 麻醉固定 | 第17页 |
| 2.1.2 分离血管 | 第17页 |
| 2.1.3 制备线栓 | 第17-18页 |
| 2.1.4 插线与结扎 | 第18页 |
| 2.1.5 缝合消毒 | 第18-19页 |
| 2.2 模型成功评价标准 | 第19页 |
| 2.3 大鼠脑组织取材 | 第19-20页 |
| 2.3.1 麻醉灌注 | 第19-20页 |
| 2.3.2 断头取脑 | 第20页 |
| 2.4 观察指标及检测方法 | 第20-25页 |
| 2.4.1 神经功能缺损评分 | 第20-21页 |
| 2.4.2 脑梗死体积检测 | 第21页 |
| 2.4.3 凋亡细胞检测与JAK2、STAT3免疫阳性细胞检测 | 第21-24页 |
| 2.4.4 统计学处理 | 第24-25页 |
| 3 实验结果 | 第25-31页 |
| 3.1 动物造模结果 | 第25-26页 |
| 3.2 大鼠神经功能缺损评分结果 | 第26页 |
| 3.3 TTC染色法检测脑梗死体积 | 第26-27页 |
| 3.4 TUNEL法检测神经细胞凋亡数量 | 第27-28页 |
| 3.5 免疫组织化学法检测JAK2、STAT3免疫阳性细胞的表达变化 | 第28-31页 |
| 3.5.1 大鼠脑缺血损伤后JAK2的表达 | 第29-30页 |
| 3.5.2 大鼠脑缺血损伤后STAT3的表达 | 第30-31页 |
| 4 讨论 | 第31-63页 |
| 4.1 缺血性中风的溯源与探索 | 第32-44页 |
| 4.1.1 古代医家对中风病的研究 | 第32-36页 |
| 4.1.2 当前中、西方医学对缺血性中风的认识 | 第36-44页 |
| 4.2 JAK2、STAT3与缺血性脑血管疾病 | 第44-47页 |
| 4.2.1 JAK/STAT信号通路与脑缺血损伤的关系 | 第44-46页 |
| 4.2.2 JAK2、STAT3蛋白与脑缺血损伤的关系 | 第46-47页 |
| 4.3 清脑益元汤防治缺血性中风的研究思路 | 第47-56页 |
| 4.3.1 肾精亏损,脑络失养为缺血性中风发病之本 | 第47-49页 |
| 4.3.2 痰瘀内阻,热毒伤髓为缺血性中风病机之要 | 第49-51页 |
| 4.3.3 清脑益元汤的治疗原则及组方思路分析 | 第51-52页 |
| 4.3.4 清脑益元汤用药原理阐述 | 第52-56页 |
| 4.4 实验结果分析 | 第56-63页 |
| 4.4.1 实验方法讨论 | 第56-61页 |
| 4.4.2 清脑益元汤对脑缺血损伤大鼠的疗效分析与机制探讨 | 第61-63页 |
| 5 存在的问题与展望 | 第63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 附录 | 第74-76页 |
| 主要缩略词表 | 第76-77页 |
| 综述 | 第77-92页 |
| 参考文献 | 第86-92页 |
| 致谢 | 第92-94页 |
| 个人简历及攻读学位期间获得的科研成果 | 第94页 |
