| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 符号说明 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-22页 |
| 引言 | 第14页 |
| 1.1 植物与非生物胁迫 | 第14-16页 |
| 1.1.1 植物与渗透胁迫 | 第14-15页 |
| 1.1.2 植物与离子胁迫 | 第15页 |
| 1.1.3 植物与氧化胁迫 | 第15-16页 |
| 1.2 ABA信号通路 | 第16-18页 |
| 1.2.1 ABA与非生物胁迫 | 第16页 |
| 1.2.2 ABA依赖与非依赖信号通路 | 第16-17页 |
| 1.2.3 ABA信号通路与植物的耐旱机制 | 第17-18页 |
| 1.3 甲硫氨酸亚砜还原酶(MSR) | 第18-21页 |
| 1.3.1 蛋白质中甲硫氨酸(Met)的氧化与还原 | 第18页 |
| 1.3.2 MSR的种类 | 第18-19页 |
| 1.3.3 MSR的催化机制 | 第19-20页 |
| 1.3.4 植物MSRA的研究进展 | 第20-21页 |
| 1.4 本论文的主要研究内容和意义 | 第21-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第22页 |
| 2.1.2 拟南芥生长时期选择及各种处理 | 第22页 |
| 2.1.3 菌株与载体 | 第22-23页 |
| 2.1.4 试剂 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-30页 |
| 2.2.1 基因cDNA的克隆与序列分析 | 第24-25页 |
| 2.2.2 原核表达和酶活测定 | 第25-26页 |
| 2.2.3 亚细胞定位 | 第26-27页 |
| 2.2.4 拟南芥过表达载体构建及纯系筛选 | 第27页 |
| 2.2.5 过表达拟南芥表型实验 | 第27-28页 |
| 2.2.6 过表达拟南芥相关通路marker基因的表达模式分析 | 第28页 |
| 2.2.7 相关生理指标的测定 | 第28-30页 |
| 第三章 ZmMSRA2的功能及作用机制 | 第30-48页 |
| 引言 | 第30页 |
| 3.1 非生物胁迫可以诱导ZmMSRA2基因的表达 | 第30-31页 |
| 3.2 ZmMSRA2基因和蛋白序列分析 | 第31页 |
| 3.3 基因序列同源分析 | 第31-32页 |
| 3.4 启动子分析 | 第32页 |
| 3.5 ZmMSRA2定位于细胞质 | 第32-33页 |
| 3.6 原核表达 | 第33-34页 |
| 3.7 ZmMSRA2基因拟南芥过表达株系的获得 | 第34-36页 |
| 3.7.1 ZmMSRA2基因拟南芥过表达株系的获得 | 第34页 |
| 3.7.2 转基因拟南芥MSR酶活测定 | 第34-35页 |
| 3.7.3 转基因拟南芥株系中AtMSR基因表达量检测 | 第35-36页 |
| 3.8 ZmMSRA2在拟南芥非生物胁迫中的作用 | 第36-42页 |
| 3.8.1 ZmMSRA2提高植株对干旱胁迫的抗性 | 第36-38页 |
| 3.8.1.1 ZmMSRA2缓解了干旱胁迫对萌发的延迟和抑制 | 第36-37页 |
| 3.8.1.2 ZmMSRA2增强幼苗对干旱胁迫的抗性 | 第37-38页 |
| 3.8.2 ZmMSRA2提高植株对盐胁迫的抗性 | 第38页 |
| 3.8.3 ZmMSRA2基因拟南芥过表达株系对ABA不敏感 | 第38-40页 |
| 3.8.3.1 ZmMSRA2缓解了ABA对萌发的延迟和抑制 | 第39页 |
| 3.8.3.2 ZmMSRA2过表达株系对ABA不敏感 | 第39-40页 |
| 3.8.4 ZmMSRA2耐旱与ABA有关 | 第40-41页 |
| 3.8.5 ZmMSRA2增强转基因拟南芥的氧化胁迫抗性 | 第41-42页 |
| 3.9 ZmMSRA2作用的生理机制 | 第42-45页 |
| 3.9.1 ZmMSRA2基因降低拟南芥过表达株系中的ROS含量 | 第42页 |
| 3.9.2 ZmMSRA2基因拟南芥过表达株系ROS清除酶基因表达增强,酶活提高 | 第42-44页 |
| 3.9.3 ZmMSRA2影响ABA信号通路 | 第44页 |
| 3.9.4 ZmMSRA2基因拟南芥过表达株系脯氨酸合成关键酶基因表达上调,脯氨酸含量增加 | 第44-45页 |
| 3.10 讨论 | 第45-48页 |
| 第四章 ZmMSRA5.1的功能及作用机制 | 第48-62页 |
| 引言 | 第48页 |
| 4.1 非生物胁迫可以诱导ZmMSRA5.1基因的表达 | 第48-49页 |
| 4.2 ZmMSRA5.1基因和蛋白序列分析 | 第49页 |
| 4.3 基因序列同源分析 | 第49-50页 |
| 4.4 启动子分析 | 第50页 |
| 4.5 ZmMSRA5.1属于分泌型蛋白 | 第50-51页 |
| 4.6 原核表达 | 第51-52页 |
| 4.7 ZmMSRA5.1基因拟南芥过表达株系的获得 | 第52-54页 |
| 4.7.1 ZmMSRA5.1基因拟南芥过表达株系的获得 | 第52页 |
| 4.7.2 转基因拟南芥MSR酶活测定 | 第52-53页 |
| 4.7.3 过表达拟南芥株系中AtMSR基因表达量检测 | 第53-54页 |
| 4.8 拟南芥表型实验 | 第54-58页 |
| 4.8.1 ZmMSR5.1增强幼苗对旱胁迫的抗性 | 第54-55页 |
| 4.8.2 ZmMSRA5.1提高植株对盐胁迫的抗性 | 第55-57页 |
| 4.8.2.1 ZmMSRA5.1缓解了盐胁迫对萌发的延迟和抑制 | 第55-56页 |
| 4.8.2.2 ZmMSR5.1增强幼苗对盐胁迫的抗性 | 第56-57页 |
| 4.8.3 ZmMSRA5.1提高过表达拟南芥的氧化胁迫抗性 | 第57-58页 |
| 4.9 ZmMSRA5.1作用的生理机制 | 第58-60页 |
| 4.9.1 ZmMSRA5.1降低拟南芥过表达株系的ROS含量 | 第58页 |
| 4.9.2 ZmMSRA5.1基因拟南芥过表达株系ROS清除酶基因表达增强,酶活提高 | 第58-60页 |
| 4.9.3 ZmMSRA5.1影响离子通道蛋白相关基因的表达 | 第60页 |
| 4.10 讨论 | 第60-62页 |
| 附录 | 第62-66页 |
| 参考文献 | 第66-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第77页 |
