| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-22页 |
| 研究现状、成果 | 第14-20页 |
| 研究目的、方法 | 第20-22页 |
| 一、血清淀粉样蛋白A在类风湿关节炎患者体内表达的研究 | 第22-35页 |
| 1.1 对象和方法 | 第22-29页 |
| 1.1.1 研究对象 | 第22页 |
| 1.1.2 试剂与仪器 | 第22-23页 |
| 1.1.2.1 材料与试剂 | 第22-23页 |
| 1.1.2.2 仪器及设备 | 第23页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第23-29页 |
| 1.1.3.1 ELISA法测定血清、关节液SAA含量 | 第23-24页 |
| 1.1.3.2 Western blot测定血清样本中SAA的表达 | 第24-27页 |
| 1.1.3.3 免疫组织化学技术检测滑膜组织中SAA表达 | 第27-29页 |
| 1.1.4 统计学分析 | 第29页 |
| 1.2 结果 | 第29-32页 |
| 1.2.1 SAA在血清中含量 | 第29-30页 |
| 1.2.2 SAA在关节液中含量 | 第30页 |
| 1.2.3 血清与关节液中SAA含量的相关性分析 | 第30页 |
| 1.2.4 SAA在血清中的表达 | 第30-31页 |
| 1.2.5 SAA在滑膜组织中的表达 | 第31-32页 |
| 1.3 讨论 | 第32-34页 |
| 1.3.1 研究背景 | 第32页 |
| 1.3.2 血清SAA含量的差异 | 第32-33页 |
| 1.3.3 关节液SAA含量分析及其与血清含量相关性分析 | 第33页 |
| 1.3.4 滑膜SAA表达分析 | 第33-34页 |
| 1.4 小结 | 第34-35页 |
| 二、SAA与SR-B1受体结合诱导内皮细胞增殖和血管形成 | 第35-51页 |
| 2.1 对象和方法 | 第35-41页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第35页 |
| 2.1.2 试剂与仪器 | 第35页 |
| 2.1.2.1 材料与试剂 | 第35页 |
| 2.1.2.2 仪器及设备 | 第35页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第35-41页 |
| 2.1.3.1 HUVECs细胞培养 | 第35-36页 |
| 2.1.3.2 免疫组织化学技术检测滑膜组织SR-B1受体表达 | 第36-37页 |
| 2.1.3.3 细胞免疫荧光技术检测HUVECs SR-B1受体表达 | 第37-38页 |
| 2.1.3.4 MTT实验分析HUVECs增殖 | 第38-39页 |
| 2.1.3.5 细胞迁移实验分析HUVECs迁移 | 第39-40页 |
| 2.1.3.6 体外血管生成三维模型构建 | 第40-41页 |
| 2.1.4 统计学分析 | 第41页 |
| 2.2 结果 | 第41-46页 |
| 2.2.1 HUVECs细胞形态观察 | 第41-42页 |
| 2.2.2 免疫组织化学技术检测滑膜组织SR-B1受体表达 | 第42-43页 |
| 2.2.3 细胞免疫荧光技术检测HUVECs SR-B1受体表达 | 第43页 |
| 2.2.4 MTT实验分析HUVECs增殖 | 第43-44页 |
| 2.2.5 细胞迁移实验分析HUVECs迁移 | 第44-45页 |
| 2.2.6 体外血管生成三维模型构建 | 第45-46页 |
| 2.3 讨论 | 第46-50页 |
| 2.3.1 研究背景 | 第46-47页 |
| 2.3.2 滑膜组织和HUVECs细胞SR-B1受体表达 | 第47-48页 |
| 2.3.3 SAA刺激HUVECs细胞增殖和细胞迁移 | 第48-49页 |
| 2.3.4 SAA和SR-B1受体在体外血管生成中发挥的作用 | 第49-50页 |
| 2.4 小结 | 第50-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第59-60页 |
| 综述 血清淀粉样蛋白A在类风湿关节炎中的研究进展 | 第60-71页 |
| 综述参考文献 | 第65-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
