| 英文缩略表 | 第4-6页 |
| 目录 | 第6-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 1. 前言 | 第14-27页 |
| 1.1 硫丹的结构和理化性质 | 第14页 |
| 1.2 硫丹应用概况 | 第14-15页 |
| 1.3 硫丹在环境中残留状况及迁移转化 | 第15-16页 |
| 1.4 硫丹的生态毒性 | 第16-17页 |
| 1.5 硫丹的微生物降解研究进展 | 第17-20页 |
| 1.6 土壤中残留毒性的提取方法研究 | 第20-21页 |
| 1.7 残留毒性的检测评价方法 | 第21-24页 |
| 1.7.1 单细胞凝胶电泳实验 | 第22-23页 |
| 1.7.2 蚕豆微核实验 | 第23-24页 |
| 1.8 硫丹残留的测定方法 | 第24-25页 |
| 1.9 本文研究内容 | 第25-27页 |
| 2. 材料与方法 | 第27-47页 |
| 2.1 药品试剂 | 第27-28页 |
| 2.2 仪器设备 | 第28-29页 |
| 2.3 供试材料 | 第29-32页 |
| 2.3.1 土壤样品 | 第29页 |
| 2.3.2 培养基 | 第29-30页 |
| 2.3.3 标准溶液的配制 | 第30-32页 |
| 2.4 细菌生长量的测定方法 | 第32-33页 |
| 2.5 硫丹及其降解产物的提取和测定 | 第33-35页 |
| 2.5.1 培养液中硫丹的提取 | 第33页 |
| 2.5.2 硫丹的气相色谱分析 | 第33页 |
| 2.5.3 GC-FID分析方法的标准曲线的绘制及可靠性测定 | 第33-34页 |
| 2.5.4 硫丹降解率的计算 | 第34页 |
| 2.5.5 硫丹降解产物的的GC-MS分析 | 第34-35页 |
| 2.6 硫丹降解细菌的筛选 | 第35页 |
| 2.6.1 菌悬液的制备 | 第35页 |
| 2.6.2 降解能力的测定 | 第35页 |
| 2.7 硫丹高效降解菌的鉴定 | 第35-37页 |
| 2.7.1 细菌的菌落形态及生理生化鉴定 | 第35页 |
| 2.7.2 细菌的16S rDNA鉴定 | 第35-37页 |
| 2.8 硫丹高效降解细菌的降解特性研究 | 第37-38页 |
| 2.8.1 初始pH值对降解菌的生长和降解能力的影响 | 第37页 |
| 2.8.2 温度对降解菌的生长和降解能力的影响 | 第37-38页 |
| 2.8.3 硫丹浓度对降解菌的生长和降解能力的影响 | 第38页 |
| 2.8.4 加菌量对降解菌的生长和降解能力的影响 | 第38页 |
| 2.8.5 最佳条件下硫丹降解菌的生长和降解曲线 | 第38页 |
| 2.9 硫丹降解酶的初步研究 | 第38-39页 |
| 2.9.1 降解酶的提取 | 第38页 |
| 2.9.2 硫丹降解酶的酶促反应 | 第38-39页 |
| 2.10 土壤中残留毒性的提取方法研究 | 第39-42页 |
| 2.10.1 农药设定浓度 | 第39页 |
| 2.10.2 有机溶剂提取方法 | 第39-41页 |
| 2.10.3 去离子水提取方法 | 第41-42页 |
| 2.10.4 泥浆直接暴露染毒法 | 第42页 |
| 2.11 彗星实验 | 第42-44页 |
| 2.11.1 试剂配制 | 第42-43页 |
| 2.11.2 蚯蚓体腔细胞提取 | 第43页 |
| 2.11.3 彗星实验步骤 | 第43-44页 |
| 2.11.4 观察和分析 | 第44页 |
| 2.12 微核实验 | 第44-46页 |
| 2.12.1 试剂的配制 | 第44页 |
| 2.12.2 测定步骤 | 第44-46页 |
| 2.12.3 结果与计算 | 第46页 |
| 2.13 硫丹降解前后生态毒性变化 | 第46页 |
| 2.14 数据处理 | 第46-47页 |
| 3. 结果与分析 | 第47-71页 |
| 3.1 培养液中硫丹GC-FID残留测定方法及其可靠性验证 | 第47-49页 |
| 3.1.1 分析方法的线性关系与相关性 | 第47-48页 |
| 3.1.2 分析方法的可靠性测定 | 第48页 |
| 3.1.3 硫丹在GC-FID条件下的色谱图 | 第48-49页 |
| 3.2 硫丹高效降解细菌的分离筛选 | 第49-50页 |
| 3.3 硫丹高效降解菌JW2、NS的鉴定 | 第50-55页 |
| 3.3.1 细菌的形态及生理生化鉴定 | 第50-51页 |
| 3.3.2 16S rDNA鉴定 | 第51-55页 |
| 3.4 高效降解菌JW2的降解特性及环境条件对降解的影响 | 第55-58页 |
| 3.4.1 初始pH值对JW2的生长和降解能力的影响 | 第55页 |
| 3.4.2 培养温度对JW2的生长和降解能力的影响 | 第55-56页 |
| 3.4.3 硫丹浓度对JW2的生长和降解能力的影响 | 第56-57页 |
| 3.4.4 加菌量对JW2的生长和降解能力的影响 | 第57页 |
| 3.4.5 最优条件下菌株JW2的生长曲线和硫丹降解曲线 | 第57-58页 |
| 3.5 高效降解菌NS的降解特性及环境条件对降解的影响 | 第58-61页 |
| 3.5.1 初始pH值对NS的生长和降解能力的影响 | 第58-59页 |
| 3.5.2 培养温度对NS的生长和降解能力的影响 | 第59页 |
| 3.5.3 硫丹浓度对NS的生长和降解能力的影响 | 第59-60页 |
| 3.5.4 加菌量对NS的生长和降解能力的影响 | 第60页 |
| 3.5.5 最优条件下菌株NS的生长曲线和硫丹降解曲线 | 第60-61页 |
| 3.6 硫丹的代谢产物分析 | 第61-63页 |
| 3.7 硫丹降解菌的提取及酶促反应 | 第63-64页 |
| 3.8 土壤中残留毒性的提取方法研究 | 第64-70页 |
| 3.8.1 硫丹 | 第64-65页 |
| 3.8.2 啶虫脒 | 第65-67页 |
| 3.8.3 莠去津 | 第67-68页 |
| 3.8.4 吡虫啉 | 第68-70页 |
| 3.9 硫丹降解前后生态毒性变化 | 第70-71页 |
| 4. 讨论 | 第71-77页 |
| 4.1 降解代谢硫丹的微生物 | 第71-72页 |
| 4.2 硫丹降解的影响因子 | 第72-73页 |
| 4.3 硫丹的降解产物和降解途径 | 第73-74页 |
| 4.4 土壤中残留毒性的提取方法比较 | 第74-75页 |
| 4.5 硫丹降解前后生态毒性变化 | 第75-76页 |
| 4.6 硫丹降解菌研究实验的后续展望 | 第76-77页 |
| 5. 结论 | 第77-78页 |
| 6. 本研究的创新之处 | 第78-79页 |
| 7. 参考文献 | 第79-86页 |
| 8. 致谢 | 第86-87页 |
| 9. 攻读学位期间发表论文情况 | 第87页 |
