摘要 | 第8-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
缩略语表 | 第14-15页 |
第1章 前言 | 第15-41页 |
1.1 对虾养殖概况 | 第15-18页 |
1.1.1 对虾养殖品种及养殖模式 | 第15-17页 |
1.1.2 对虾养殖发展面临的问题 | 第17-18页 |
1.2 微生态制剂在对虾养殖过程中的应用 | 第18-24页 |
1.2.1 微生态制剂的定义 | 第18页 |
1.2.2 微生态制剂作用机理 | 第18-19页 |
1.2.3 芽胞杆菌应用现状 | 第19-21页 |
1.2.4 硝化细菌应用现状 | 第21-22页 |
1.2.5 其他微生态制剂应用现状 | 第22-23页 |
1.2.6 微生态制剂在应用中存在的基础性问题 | 第23-24页 |
1.3 微生物群落结构分析方法 | 第24-30页 |
1.3.1 基于可培养的传统微生物分析方法 | 第24页 |
1.3.2 基于分子生物学的现代分析方法 | 第24-30页 |
1.4 对虾养殖水体微生物群落结构研究现状 | 第30-34页 |
1.4.1 对虾养殖水体微生物优势种群 | 第30页 |
1.4.2 芽胞杆菌制剂对水体菌群结构的影响 | 第30-31页 |
1.4.3 硝化细菌制剂对水体菌群结构的影响 | 第31-34页 |
1.5 对虾肠道微生物群落结构研究现状 | 第34-37页 |
1.5.1 对虾肠道微生物优势种群 | 第34页 |
1.5.2 微生态制剂对虾肠道微生物群落结构的影响 | 第34-37页 |
1.6 藻菌关系对微生态制剂开发和应用的影响 | 第37-39页 |
1.6.1 藻菌相互作用模式 | 第37-38页 |
1.6.2 微藻与硝化细菌关系研究现状 | 第38-39页 |
1.6.3 微藻对硝化细菌的作用机理研究现状 | 第39页 |
1.7 研究目的和意义 | 第39-41页 |
第2章 微生态制剂对南美白对虾不同养殖阶段水质、对虾生长特性的影响 | 第41-54页 |
2.1 材料与方法 | 第41-45页 |
2.1.1 试验菌株 | 第41-42页 |
2.1.2 对虾品种 | 第42页 |
2.1.3 对虾养殖场及基本设施 | 第42页 |
2.1.4 对虾养殖过程管理 | 第42-43页 |
2.1.5 试验处理 | 第43页 |
2.1.6 取样点设置及取样频次 | 第43页 |
2.1.7 水质测定方法 | 第43页 |
2.1.8 对虾体长及体重测定方法 | 第43-44页 |
2.1.9 对虾产量、饲料系数、成活率测定方法 | 第44页 |
2.1.10 数据统计分析方法 | 第44页 |
2.1.11 作图方法 | 第44-45页 |
2.2 结果与分析 | 第45-51页 |
2.2.1 枯草芽胞杆菌FY99-01和硝化杆菌Y3-2 对养殖水体水质的影响 | 第45-49页 |
2.2.2 枯草芽胞杆菌FY99-01和硝化杆菌Y3-2 对对虾生长速度的影响 | 第49-51页 |
2.2.3 枯草芽胞杆菌FY99-01和硝化杆菌Y3-2 对对虾成活率、饲料转化系数及产量的影响 | 第51页 |
2.3 讨论 | 第51-53页 |
2.3.1 微生态制剂对对虾养殖水体水质的改善 | 第51-52页 |
2.3.2 微生态制剂对对虾生长特性、饲料转化系数、成活率及产量的改善 | 第52-53页 |
2.4 小结 | 第53-54页 |
第3章 微生态制剂对南美白对虾不同养殖阶段水体、虾肠道细菌群落结构的影响 | 第54-87页 |
3.1 材料与方法 | 第54-59页 |
3.1.1 试验菌株及对虾品种 | 第54页 |
3.1.2 对虾养殖场地、菌剂使用、养殖管理 | 第54页 |
3.1.3 水样取样及DNA提取方法 | 第54-55页 |
3.1.4 虾肠道取样及DNA提取方法 | 第55-56页 |
3.1.5 水体弧菌计数方法 | 第56页 |
3.1.6 DGGE及分析方法 | 第56-58页 |
3.1.7 高通量测序及分析方法 | 第58页 |
3.1.8 测序基因登记数据库及登记号 | 第58页 |
3.1.9 微生态制剂对不同养殖阶段水体微生态群落结构影响的试验设计 | 第58-59页 |
3.1.10 微生态制剂对对虾肠道总细菌及弧菌群落结构的影响试验设计 | 第59页 |
3.1.11 数据统计分析方法 | 第59页 |
3.1.12 作图软件 | 第59页 |
3.2 结果与分析 | 第59-82页 |
3.2.1 养殖前期微生态制剂对水体细菌群落结构的影响 | 第59-61页 |
3.2.2 养殖中期微生态制剂对水体细菌群落结构的影响 | 第61-63页 |
3.2.3 养殖后期微生态制剂对水体细菌群落结构的影响 | 第63-65页 |
3.2.4 基于高通量测序分析微生态制剂对水体细菌群落结构的影响 | 第65-71页 |
3.2.5 微生态制剂对虾肠道总细菌群落结构的影响 | 第71-76页 |
3.2.6 微生态制剂对弧菌群落结构的影响 | 第76-79页 |
3.2.7 养殖水体和虾肠道优势菌群对比分析 | 第79-82页 |
3.3 讨论 | 第82-85页 |
3.3.1 南美白对虾养殖水体和虾肠道优势菌群 | 第82-83页 |
3.3.2 芽孢杆菌对养殖水体细菌群落结构的影响 | 第83-84页 |
3.3.3 芽孢杆菌对虾肠道总细菌及弧菌群落结构的影响 | 第84页 |
3.3.4 硝化细菌对养殖水体及虾肠道微生态群落结构的影响 | 第84-85页 |
3.4 小结 | 第85-87页 |
第4章 养殖水体中藻对硝化细菌发挥作用的影响 | 第87-101页 |
4.1 材料与方法 | 第87-92页 |
4.1.1 试验菌株 | 第87页 |
4.1.2 硝化细菌培养方法 | 第87-88页 |
4.1.3 水质检测方法 | 第88页 |
4.1.4 水体藻类种群分析方法 | 第88页 |
4.1.5 潜在硝化速率的测定 | 第88-89页 |
4.1.6 DNA提取及定量PCR方法 | 第89-90页 |
4.1.7 光抑制模型试验设计 | 第90-91页 |
4.1.8 水产养殖模型试验设计 | 第91-92页 |
4.1.9 统计方法 | 第92页 |
4.1.10 作图方法 | 第92页 |
4.2 结果与分析 | 第92-99页 |
4.2.1 模型中藻类种群的分析结果 | 第92-93页 |
4.2.2 光抑制模型中水质分析结果 | 第93-94页 |
4.2.3 光抑制模型中藻类含量、硝化细菌含量及活性分析结果 | 第94-96页 |
4.2.4 水产养殖模型中水质分析结果 | 第96页 |
4.2.5 水产养殖模型中藻类含量及硝化活性分析结果 | 第96-99页 |
4.3 讨论 | 第99-100页 |
4.3.1 藻类生长和光照共同抑制硝化作用 | 第99页 |
4.3.2 藻抑制和光抑制的区别 | 第99-100页 |
4.3.3 藻类抑制硝化细菌的可能机理 | 第100页 |
4.4 小结 | 第100-101页 |
第5章 藻类抑制硝化细菌发挥作用的机理初探 | 第101-114页 |
5.1 材料与方法 | 第101-105页 |
5.1.1 试验菌株 | 第101页 |
5.1.2 硝化细菌和铜绿微囊藻培养方法 | 第101-102页 |
5.1.3 水质检测方法 | 第102页 |
5.1.4 水体潜在硝化速率的测定 | 第102页 |
5.1.5 DNA提取及定量PCR方法 | 第102页 |
5.1.6 铜绿微囊藻与AOB在低氨氮浓度下的共培养试验设计 | 第102-103页 |
5.1.7 铜绿微囊藻与AOB在较高氨氮条件下的共培养试验设计 | 第103-104页 |
5.1.8 微囊藻毒素对硝化细菌生长的影响试验设计 | 第104页 |
5.1.9 数据统计分析方法 | 第104页 |
5.1.10 作图方法 | 第104-105页 |
5.2 结果与分析 | 第105-111页 |
5.2.1 铜绿微囊藻与AOB在低氨氮浓度下的共培养试验结果 | 第105-108页 |
5.2.2 铜绿微囊藻与AOB在较高氨氮条件下的共培养试验结果 | 第108-110页 |
5.2.3 微囊藻毒素对硝化细菌生长的影响试验结果 | 第110-111页 |
5.3 讨论 | 第111-113页 |
5.3.1 铜绿微囊藻通过氨氮竞争抑制AOB生长 | 第111-112页 |
5.3.2 微囊藻毒素对硝化细菌生长的影响 | 第112页 |
5.3.3 藻类生长可致水体“N循环短路” | 第112-113页 |
5.4 小结 | 第113-114页 |
第6章 主要结论与展望 | 第114-118页 |
6.1 主要结论 | 第114-116页 |
6.2 创新点 | 第116页 |
6.3 微生态制剂在对虾养殖中的应用展望 | 第116-117页 |
6.4 藻菌关系与水体氮循环关联的认识 | 第117-118页 |
参考文献 | 第118-130页 |
附录 | 第130-136页 |
1. 攻读博士期间的写作和发表的学术论文及专利 | 第130-132页 |
2. 试验期间现场照片 | 第132-136页 |
致谢 | 第136-137页 |