| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第11-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-15页 |
| 第2章 文献综述 | 第15-27页 |
| 2.1 MDSCs生物学特性 | 第15-17页 |
| 2.1.1 MDSCs起源 | 第15页 |
| 2.1.2 MDSCs亚群和表型 | 第15-17页 |
| 2.2 MDSCs免疫抑制机制 | 第17-21页 |
| 2.2.1 Arg-1 和iNOS | 第18页 |
| 2.2.2 氧化应激 | 第18-19页 |
| 2.2.3 细胞因子 | 第19页 |
| 2.2.4 MDSCs与Tregs | 第19-20页 |
| 2.2.5 MDSCs与NK细胞和NKT细胞 | 第20-21页 |
| 2.3 MDSCs扩增、活化机制 | 第21-22页 |
| 2.3.1 MDSCs扩增机制 | 第21页 |
| 2.3.2 MDSCs活化机制 | 第21-22页 |
| 2.4 MDSCs与病毒感染 | 第22-23页 |
| 2.5 MDSCs与HCV | 第23页 |
| 2.6 耗竭MDSCs的治疗策略 | 第23-24页 |
| 2.7 结语 | 第24-27页 |
| 第3章 材料与方法 | 第27-39页 |
| 3.1 实验材料 | 第27-29页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第27-28页 |
| 3.1.2 实验设备 | 第28-29页 |
| 3.1.3 实验器具 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-37页 |
| 3.2.1 主要试剂配制 | 第29-30页 |
| 3.2.2 标本来源 | 第30页 |
| 3.2.3 PBMCs的分离纯化 | 第30页 |
| 3.2.4 CD14+细胞的分离 | 第30-31页 |
| 3.2.5 CD4+细胞的分离 | 第31页 |
| 3.2.6 细胞培养 | 第31页 |
| 3.2.7 细胞冻存 | 第31页 |
| 3.2.8 细胞复苏 | 第31页 |
| 3.2.9 流式细胞术 | 第31-32页 |
| 3.2.10 IFN-α 和IFN-β 的检测 | 第32-33页 |
| 3.2.11 TNF-α、IL-1β 和IL-10的检测 | 第33-34页 |
| 3.2.12 实时定量PCR | 第34-37页 |
| 3.2.13 T细胞抑制实验 | 第37页 |
| 3.3 统计分析 | 第37-39页 |
| 第4章 结果与讨论 | 第39-59页 |
| 4.1 HCV调控PBMCs中MDSCs的产生 | 第39-48页 |
| 4.1.1 实验结果 | 第39-45页 |
| 4.1.2 讨论 | 第45-47页 |
| 4.1.3 小结 | 第47-48页 |
| 4.2 HCV调控MDSCs产生的机制 | 第48-53页 |
| 4.2.1 实验结果 | 第48-51页 |
| 4.2.2 讨论 | 第51-52页 |
| 4.2.3 小结 | 第52-53页 |
| 4.3 IL-10在自分泌细胞因子中起核心调节作用 | 第53-59页 |
| 4.3.1 实验结果 | 第53-56页 |
| 4.3.2 讨论 | 第56-57页 |
| 4.3.3 小结 | 第57-59页 |
| 第5章 结论 | 第59-61页 |
| 本研究的创新与不足 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-77页 |
| 附录 | 第77-79页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81页 |