| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要符号表 | 第9-10页 |
| 第一章 引言 | 第10-18页 |
| 1.1 海洋药物 | 第10-13页 |
| 1.1.1 海洋动物类药物 | 第10-11页 |
| 1.1.2 海洋植物类药物 | 第11页 |
| 1.1.3 海洋微生物类药物 | 第11-13页 |
| 1.2 海蛾 | 第13-16页 |
| 1.2.1 海蛾的药用 | 第13-14页 |
| 1.2.2 海蛾的现代药理学研究 | 第14-16页 |
| 1.3 本课题的主要研究内容及创新之处 | 第16-18页 |
| 1.3.1 本课题的研究背景及立论依据 | 第16页 |
| 1.3.2 本课题的主要研究内容 | 第16-17页 |
| 1.3.3 本课题的主要创新之处 | 第17-18页 |
| 第二章 海蛾活性组分的分离纯化 | 第18-38页 |
| 2.1 实验仪器与设备 | 第18页 |
| 2.2 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.3 实验原理 | 第19-20页 |
| 2.4 实验方法和步骤 | 第20-24页 |
| 2.4.1 海蛾乙醇提取物和水提取物的制备 | 第20页 |
| 2.4.2 海蛾乙醇提取物的硅胶柱分离 | 第20-21页 |
| 2.4.3 石油醚提取物和乙酸乙酯提取物的硅胶柱分离 | 第21-22页 |
| 2.4.4 乙酸乙酯提取物样品分析方法的确定 | 第22页 |
| 2.4.5 石油醚提取物样品分析方法的确定 | 第22页 |
| 2.4.6 乙酸乙酯、石油醚提取物样品的制备 | 第22-23页 |
| 2.4.7 分析型HPLC鉴定海蛾乙酸乙酯、石油醚提取物单组分 | 第23页 |
| 2.4.8 海蛾甲醇提取物样品分析方法的确定 | 第23-24页 |
| 2.4.9 甲醇提取物样品的制备 | 第24页 |
| 2.5 实验结果 | 第24-37页 |
| 2.5.1 乙酸乙酯提取物A | 第24-25页 |
| 2.5.2 乙酸乙酯提取物B | 第25-26页 |
| 2.5.3 乙酸乙酯提取物C | 第26页 |
| 2.5.4 乙酸乙酯提取物D | 第26-27页 |
| 2.5.5 乙酸乙酯提取物E | 第27-28页 |
| 2.5.6 乙酸乙酯提取物F | 第28页 |
| 2.5.7 石油醚提取物A | 第28-29页 |
| 2.5.8 石油醚提取物B | 第29-30页 |
| 2.5.9 甲醇提取物 | 第30-31页 |
| 2.5.10 海蛾乙酸乙酯、石油醚、甲醇提取物保留时间的分析 | 第31-32页 |
| 2.5.11 海蛾乙酸乙酯、石油醚提取物单组分的结果分析 | 第32-35页 |
| 2.5.12 海蛾甲醇提取物单组份分析 | 第35-36页 |
| 2.5.13 得率计算 | 第36-37页 |
| 2.6 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 海蛾单组分的抗癌活性评价 | 第38-48页 |
| 3.1 实验仪器与设备 | 第38页 |
| 3.2 实验试剂 | 第38-39页 |
| 3.3 实验原理 | 第39页 |
| 3.4 实验方法和步骤 | 第39-42页 |
| 3.4.1 细胞复苏 | 第39-40页 |
| 3.4.2 传代 | 第40页 |
| 3.4.3 计数 | 第40-41页 |
| 3.4.4 保种 | 第41页 |
| 3.4.5 母液制备 | 第41页 |
| 3.4.6 5-氟尿嘧啶对HeLa细胞作用标准曲线的绘制 | 第41-42页 |
| 3.5 实验结果及分析 | 第42-47页 |
| 3.5.1 MTT法检测海蛾A1组分的抗癌活性 | 第42页 |
| 3.5.2 MTT法检测海蛾A2组分的抗癌活性 | 第42-43页 |
| 3.5.3 MTT法检测海蛾A3组分的抗癌活性 | 第43-44页 |
| 3.5.4 MTT法检测海蛾A4组分的抗癌活性 | 第44-45页 |
| 3.5.5 MTT法检测海蛾A5组分的抗癌活性 | 第45页 |
| 3.5.6 MTT法检测海蛾A6组分的抗癌活性 | 第45-46页 |
| 3.5.7 MTT法检测5-氟尿嘧啶对子宫颈癌细胞HeLa的抗癌活性 | 第46-47页 |
| 3.6 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 组分A5、A6对HeLa细胞作用机制的研究 | 第48-54页 |
| 4.1 实验原理 | 第48页 |
| 4.1.1 材料 | 第48页 |
| 4.1.2 仪器 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-49页 |
| 4.3 实验结果 | 第49-53页 |
| 4.3.1 组分A5作用于HeLa细胞检测结果分析 | 第49-51页 |
| 4.3.2 组分A6作用于HeLa细胞检测结果分析 | 第51-53页 |
| 4.4 本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 组分A5、A6化学结构分析 | 第54-61页 |
| 5.1 实验原理 | 第54页 |
| 5.2 实验仪器及试剂 | 第54-55页 |
| 5.3 实验结果 | 第55-59页 |
| 5.3.1 A5质谱、红外光谱,核磁共振检测结果 | 第55-57页 |
| 5.3.2 A6质谱、红外光谱,核磁共振检测结果 | 第57-59页 |
| 5.4 结果分析 | 第59-60页 |
| 5.5 本章小结 | 第60-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 存在问题及展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 附录 | 第68-78页 |
| 一、硅胶板TLC最佳分离效果 | 第68-70页 |
| 二、A1、A2、A3、A4液质联用图谱 | 第70-73页 |
| 三、A1、A2、A3、A4红外图谱 | 第73-75页 |
| 四、J1、J2、J3质谱图 | 第75-76页 |
| 五、J1、J2、J3红外图谱 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 成果 | 第79-80页 |
| 个人简历 | 第80页 |
