| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 绪论 | 第10-22页 |
| 1.1 甾体化合物概述 | 第10-11页 |
| 1.2 甾体化合物的微生物转化法的研究 | 第11-14页 |
| 1.2.1 甾体化合物的微生物转化反应的类型 | 第12-13页 |
| 1.2.2 几种常见且重要的甾体微生物转化反应类型 | 第13-14页 |
| 1.3 微生物降解植物甾醇 | 第14-18页 |
| 1.3.1 植物甾醇的简介 | 第14-15页 |
| 1.3.2 雄烯二酮的简介 | 第15-16页 |
| 1.3.3 雄烯二酮的生产方法 | 第16-18页 |
| 1.4 微生物法生产雄烯二酮的研究现状 | 第18-20页 |
| 1.4.1 雄烯二酮生产菌株选育和改造的研究 | 第18-19页 |
| 1.4.2 增加底物溶解性方法的研究 | 第19页 |
| 1.4.3 解除产物抑制作用的研究 | 第19-20页 |
| 1.4.4 改善细胞通透性技术的研究 | 第20页 |
| 1.5 主要研究内容 | 第20-22页 |
| 2 微生物转化法生产雄烯二酮测定方法的建立 | 第22-32页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第22页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 发酵液的制备 | 第23页 |
| 2.2.2 样品的处理 | 第23-24页 |
| 2.2.3 检测方法 | 第24-25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-30页 |
| 2.3.1 薄层层析法 | 第25-26页 |
| 2.3.2 紫外可见光分光光度法 | 第26-27页 |
| 2.3.3 高效液相色谱法 | 第27页 |
| 2.3.4 气相色谱法 | 第27-30页 |
| 2.4 本章小结 | 第30-32页 |
| 3 雄烯二酮发酵工艺的优化 | 第32-60页 |
| 3.1 实验材料 | 第32-34页 |
| 3.1.1 实验菌株 | 第32页 |
| 3.1.2 主要实验仪器 | 第32-33页 |
| 3.1.3 主要实验药品与试剂 | 第33页 |
| 3.1.4 培养基与培养方法 | 第33-34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-39页 |
| 3.2.1 种子培养基的优化 | 第34-35页 |
| 3.2.2 菌体生长曲线的测定 | 第35页 |
| 3.2.3 不同种类的助溶剂对微生物转化甾醇生产雄烯二酮的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.4 摇瓶发酵培养基的优化 | 第36-38页 |
| 3.2.5 摇瓶发酵培养条件的优化 | 第38-39页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第39-57页 |
| 3.3.1 种子培养基的优化 | 第39-43页 |
| 3.3.2 菌体的生长曲线 | 第43页 |
| 3.3.3 助溶剂对微生物转化甾醇生产雄烯二酮的影响 | 第43-46页 |
| 3.3.4 摇瓶发酵培养基的优化 | 第46-53页 |
| 3.3.5 摇瓶发酵培养条件的优化 | 第53-57页 |
| 3.4 本章小结 | 第57-60页 |
| 4 发酵产物分离提取的研究 | 第60-70页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第60-61页 |
| 4.1.1 主要实验材料 | 第60页 |
| 4.1.2 主要实验仪器 | 第60-61页 |
| 4.2 实验方案 | 第61-62页 |
| 4.2.1 两相发酵体系中产物的提取工艺 | 第61页 |
| 4.2.2 发酵液中雄烯二酮浓度的测定 | 第61页 |
| 4.2.3 预处理方式的研究 | 第61页 |
| 4.2.4 萃取条件对萃取效果的影响 | 第61-62页 |
| 4.2.5 产品纯度以及提取收率的计算 | 第62页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第62-67页 |
| 4.3.1 不同预处理方式对雄烯二酮浓度的影响 | 第62-63页 |
| 4.3.2 萃取条件对萃取效果的影响 | 第63-66页 |
| 4.3.3 产品的纯度的分析 | 第66-67页 |
| 4.4 本章小结 | 第67-70页 |
| 结论 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-76页 |
| 攻读学位期间发表的学术成果目录 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
