| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩写词表 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-22页 |
| 1 植物中的磷脂酶D (PLD) | 第13-22页 |
| 1.1 PLD简介 | 第13页 |
| 1.2 植物中PLD对环境胁迫的响应 | 第13-15页 |
| 1.3 植物中ABA对环境胁迫的响应 | 第15-16页 |
| 1.4 植物细胞中的活性氧 | 第16-17页 |
| 1.5 植物中的Ca~(2+) | 第17-18页 |
| 1.6 PLD、ABA、ROS和Ca~(2+)之间的信号转导 | 第18-19页 |
| 1.7 选题目的及意义 | 第19-21页 |
| 1.8 技术路线 | 第21-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-26页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第22页 |
| 2.1.1 实验材料的培养 | 第22页 |
| 2.1.2 低温胁迫下化学试剂的处理 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 高山离子芥线粒体膜结合态磷脂酶D的制备 | 第22-23页 |
| 2.2.2 高山离子芥线粒体膜结合态磷脂酶D活性的测定 | 第23页 |
| 2.2.3 高山离子芥线粒体膜结合态钙含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.4 H_2O_2含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.5 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第23页 |
| 2.2.6 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.7 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第24页 |
| 2.2.8 抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性的测定 | 第24页 |
| 2.2.9 细胞膜透性的测定 | 第24页 |
| 2.2.10 可溶性糖含量的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.11 可溶性蛋白含量的测定 | 第25页 |
| 2.2.12 脯氨酸含量的测定 | 第25页 |
| 2.3 数据统计及分析 | 第25-26页 |
| 第三章 结果与分析 | 第26-47页 |
| 3.1 低温胁迫下ABA对线粒体膜结合态PLD活性的影响 | 第26-31页 |
| 3.1.1 低温胁迫不同浓度ABA对线粒体膜结合态磷脂酶D活性的影响 | 第26-27页 |
| 3.1.2 低温胁迫下钨酸钠对线粒体膜结合态PLD活性的影响 | 第27页 |
| 3.1.3 低温胁迫下ABA+EGTA对线粒体膜结合态PLD活性的影响 | 第27-28页 |
| 3.1.4 低温胁迫下ABA对线粒体膜结合态Ca~(2+)含量的影响 | 第28-29页 |
| 3.1.5 低温胁迫下钨酸钠+CaCl_2对线粒体膜结合态PLD活性的影响 | 第29-30页 |
| 3.1.6 讨论 | 第30-31页 |
| 3.2 低温胁迫下ROS对线粒体膜结合态磷脂酶D活性的影响 | 第31-38页 |
| 3.2.1 H_2O_2对线粒体膜结合态PLD活性的的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.2 低温胁迫对H_2O_2含量的影响 | 第32-33页 |
| 3.2.3 低温胁迫下DPI对线粒体膜结合态PLD活性的影响 | 第33-34页 |
| 3.2.4 低温胁迫下DPI对线粒体膜结合态Ca~(2+)含量的影响 | 第34-35页 |
| 3.2.5 低温胁迫下DPI+CaCl_2对线粒体膜结合态PLD活性的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.6 低温胁迫下EGTA对线粒体膜结合态PLD活性的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.7 讨论 | 第37-38页 |
| 3.3 低温胁迫外源脱落酸对抗氧化酶和渗透调节物质的影响 | 第38-47页 |
| 3.3.1 低温胁迫下ABA对SOD活性的影响 | 第38页 |
| 3.3.2 低温胁迫下ABA对POD活性的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.3 低温胁迫下ABA对CAT活性的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.4 低温胁迫下ABA对APX活性的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.5 低温胁迫下ABA对电导率的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.6 低温胁迫下ABA对脯氨酸的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.7 低温胁迫下ABA对可溶性糖的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.8 低温胁迫ABA对可溶性蛋白的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.9 讨论 | 第45-47页 |
| 第四章 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-57页 |
| 硕士期间发表的学术论文 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
