| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-24页 |
| 1.1 谷胱甘肽的研究进展 | 第11-14页 |
| 1.1.1 谷胱甘肽的性质 | 第11页 |
| 1.1.2 谷胱甘肽的代谢与转运 | 第11-13页 |
| 1.1.3 谷胱甘肽的生物学功能 | 第13-14页 |
| 1.1.3.1 谷胱甘肽与植物的生长发育 | 第13页 |
| 1.1.3.2 谷胱甘肽与环境胁迫 | 第13-14页 |
| 1.2 硫代葡萄糖苷的代谢与功能 | 第14-18页 |
| 1.2.1 硫代葡萄糖苷的生物合成 | 第14-16页 |
| 1.2.1.1 氨基酸侧链的延长 | 第15页 |
| 1.2.1.2 核心结构的形成 | 第15-16页 |
| 1.2.1.3 侧链的次级修饰 | 第16页 |
| 1.2.2 硫代葡萄糖苷的降解 | 第16-17页 |
| 1.2.3 硫代葡萄糖苷的生物学功能 | 第17-18页 |
| 1.2.3.1 植物风味物质的来源 | 第17页 |
| 1.2.3.2 参与植物的防卫反应 | 第17-18页 |
| 1.2.3.3 硫苷对人类健康的作用 | 第18页 |
| 1.3 硫代葡萄糖苷生物合成过程中硫来源的研究进展 | 第18-20页 |
| 1.3.1 硫苷合成过程中的还原硫供体 | 第19-20页 |
| 1.3.1.1Cys作为还原硫供体 | 第19页 |
| 1.3.1.2GSH作为还原硫供体 | 第19-20页 |
| 1.3.2PAPS为硫苷合成提供了活化硫酸盐 | 第20页 |
| 1.4 初生硫代谢与硫代葡萄糖苷生物合成的关系 | 第20-23页 |
| 1.4.1 初生硫代谢为硫苷的合成提供原料 | 第21页 |
| 1.4.2 初生硫代谢与硫苷合成的调控机制 | 第21-23页 |
| 1.4.2.1 APK和APR等硫代谢关键基因的调控 | 第22页 |
| 1.4.2.2 MYB转录因子的调控 | 第22-23页 |
| 1.5 GSH与硫苷合成的关系 | 第23-24页 |
| 2 外源GSH处理对小白菜谷胱甘肽代谢的影响 | 第24-36页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 材料与方法 | 第24-30页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第24-25页 |
| 2.2.1.1 材料及其培养方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1.2 主要试剂 | 第25页 |
| 2.2.1.3 主要仪器 | 第25页 |
| 2.2.2 试验设计 | 第25-26页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第26-30页 |
| 2.2.3.1 总RNA提取 | 第26-27页 |
| 2.2.3.2 RNA质量的电泳检测 | 第27页 |
| 2.2.3.3 cDNA的合成 | 第27-28页 |
| 2.2.3.4 定量引物的设计以及基因表达量的测定 | 第28页 |
| 2.2.3.5 可溶性蛋白含量的测定 | 第28-29页 |
| 2.2.3.6 GSH和GSSG含量的测定 | 第29页 |
| 2.2.3.7 GR、GPx、γ-ECS、GST等GSH代谢酶活性的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.3.8 数据分析 | 第30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-34页 |
| 2.3.1 外源GSH处理对小白菜谷胱甘肽合成的影响 | 第30-32页 |
| 2.3.1.1 外源GSH处理对小白菜BcGSH1基因表达量的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.1.2 外源GSH处理对小白菜 γ-ECs酶活性的影响 | 第31页 |
| 2.3.1.3 外源GSH处理对小白菜谷胱甘肽含量的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.2 外源GSH处理对小白菜谷胱甘肽代谢酶的影响 | 第32-34页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第34-36页 |
| 3 外源GSH处理对小白菜硫代葡萄糖苷合成的影响 | 第36-48页 |
| 3.1 前言 | 第36-37页 |
| 3.2 材料与方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第37页 |
| 3.2.1.1 材料及其培养方法 | 第37页 |
| 3.2.1.2 主要试剂 | 第37页 |
| 3.2.1.3 主要仪器 | 第37页 |
| 3.2.2 试验设计 | 第37页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第37-39页 |
| 3.2.3.1 总RNA提取 | 第37页 |
| 3.2.3.2 RNA质量的电泳检测 | 第37页 |
| 3.2.3.3 cDNA的合成 | 第37页 |
| 3.2.3.4 定量引物的设计以及基因表达量的测定 | 第37-38页 |
| 3.2.3.5 硫代葡萄糖苷含量的测定 | 第38页 |
| 3.2.3.6 数据分析 | 第38-39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-45页 |
| 3.3.1 外源GSH处理对小白菜脂肪族硫代葡萄糖苷合成的影响 | 第39-42页 |
| 3.3.1.1 外源GSH处理对小白菜脂肪族硫苷合成基因表达量的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.1.2 外源GSH处理对小白菜脂肪族硫苷含量的影响 | 第40-42页 |
| 3.3.2 外源GSH处理对小白菜吲哚族硫代葡萄糖苷合成的影响 | 第42-45页 |
| 3.3.2.1 外源GSH处理对小白菜吲哚族硫苷合成基因表达量的影响 | 第42-44页 |
| 3.3.2.2 外源GSH处理对小白菜吲哚族硫苷含量的影响 | 第44-45页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第45-48页 |
| 4 外源GSH处理对小白菜初生硫代谢的影响 | 第48-54页 |
| 4.1 引言 | 第48页 |
| 4.2 材料与方法 | 第48-49页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第48页 |
| 4.2.1.1 材料及其培养方法 | 第48页 |
| 4.2.1.2 主要试剂 | 第48页 |
| 4.2.1.3 主要仪器 | 第48页 |
| 4.2.2 试验设计 | 第48-49页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第49页 |
| 4.2.3.1 总RNA提取 | 第49页 |
| 4.2.3.2 RNA质量的电泳检测 | 第49页 |
| 4.2.3.3 cDNA的合成 | 第49页 |
| 4.2.3.4 定量引物的设计以及基因表达量的测定 | 第49页 |
| 4.2.3.5 Cys含量的测定 | 第49页 |
| 4.2.3.6 数据分析 | 第49页 |
| 4.3 结果与分析 | 第49-51页 |
| 4.3.1 外源GSH处理对小白菜初生硫代谢关键基因表达量的影响 | 第49-50页 |
| 4.3.2 外源GSH处理对小白菜Cys含量的影响 | 第50-51页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第51-54页 |
| 5 结论 | 第54-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 缩略词表 | 第63-64页 |
| 个人简介 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
