摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 引言 | 第9-26页 |
1.1 巴西橡胶研究概况 | 第9-11页 |
1.1.1 巴西橡胶树简介 | 第9页 |
1.1.2 巴西橡胶白粉病 | 第9-11页 |
1.2 植物诱导抗病研究进展 | 第11-15页 |
1.2.1 植物诱导抗病的产生 | 第11页 |
1.2.2 抗病诱导因子的分类 | 第11-13页 |
1.2.3 植物诱导抗病的主要特征 | 第13-14页 |
1.2.4 植物诱导抗病机理 | 第14-15页 |
1.2.5 植物诱导抗病性的应用与展望 | 第15页 |
1.3. 植物抗病性研究概况 | 第15-24页 |
1.3.1 植物抗病反应 | 第15-16页 |
1.3.2 抗病基因的结构与功能 | 第16-20页 |
1.3.3 起源与进化 | 第20-22页 |
1.3.4 克隆与分离 | 第22-23页 |
1.3.5 RGA法研究进展 | 第23-24页 |
1.4 立题意义与实验设计 | 第24-26页 |
1.4.1 立题意义 | 第24-25页 |
1.4.2实验设计 | 第25-26页 |
2 材料与方法 | 第26-34页 |
2.1 SA浓度筛选 | 第26页 |
2.1.1 实验材料与试剂 | 第26页 |
2.1.2 实验方法 | 第26页 |
2.2 SA诱导相关酶活性变化 | 第26-27页 |
2.2.1 实验材料与试剂 | 第26页 |
2.2.2 实验方法 | 第26-27页 |
2.3 SA诱导抗性效果 | 第27页 |
2.3.1 实验材料与试剂 | 第27页 |
2.3.2 实验方法 | 第27页 |
2.4 巴西橡胶树抗病基因同源序列的克隆与分析 | 第27-34页 |
2.4.1 材料 | 第28-29页 |
2.4.1.1 质粒、菌种及生化试剂 | 第28页 |
2.4.1.2 实验常用溶液、培养基的配置及主要仪器 | 第28-29页 |
2.4.2 方法与实验步骤 | 第29-34页 |
2.4.2.1 引物设计 | 第29页 |
2.4.2.2 RNA提取 | 第29-30页 |
2.4.2.3 总RNA质量检测 | 第30页 |
2.4.2.4 cDNA的合成 | 第30页 |
2.4.2.5 PCR扩增 | 第30-31页 |
2.4.2.6 PCR产物同收 | 第31-32页 |
2.4.2.7 感受态细胞的制备 | 第32页 |
2.4.2.8 连接转化 | 第32页 |
2.4.2.9 质粒提取 | 第32-33页 |
2.4.2.10 PCR阳性鉴定 | 第33-34页 |
2.4.2.11 RGA序列分析 | 第34页 |
3 结果与分析 | 第34-56页 |
3.1 SA浓度筛选 | 第34-36页 |
3.2 SA诱导相关酶活性变化 | 第36-37页 |
3.3 SA诱导抗性效果 | 第37-38页 |
3.4 巴西橡胶树抗病基因同源序列的克隆与分析 | 第38-56页 |
3.4.1 巴西橡胶树RGA的克隆 | 第38-40页 |
3.4.1.1 巴西橡胶树总RNA的提取及RNA反转录 | 第38-39页 |
3.4.1.2 抗病基因同源序列的扩增 | 第39页 |
3.4.1.3 目的条带的回收 | 第39-40页 |
3.4.1.4 载体的连接、转化及蓝白斑筛选 | 第40页 |
3.4.1.5 PCR阳性质粒的鉴定 | 第40页 |
3.4.2 巴西橡胶RGA序列分析 | 第40-53页 |
3.4.2.1 PCR阳性鉴定测序结果的初步分析 | 第41-44页 |
3.4.2.2 巴西橡胶树RGA序列的聚类分析,及相似性比较 | 第44-50页 |
3.4.2.3 RGAs序列与已知抗病基因氨基酸多序列比对及结构域分析 | 第50页 |
3.4.2.4 氨基酸的组成及密码子的相关分析 | 第50页 |
3.4.2.5 RGAs氨基酸序列同源性分析 | 第50-53页 |
3.4.3 RGAs多态性分析 | 第53-56页 |
4 讨论 | 第56-59页 |
4.1 SA诱导巴西橡胶树酶活性变化及抗性效果 | 第56-57页 |
4.2 巴西橡胶树抗病基因同源序列的克隆与分析 | 第57-59页 |
5 全文结论 | 第59-61页 |
5.1 SA诱导巴西橡胶树酶活性变化及抗性效果 | 第59页 |
5.2 巴西橡胶树抗病基因同源序列的克隆与分析 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-68页 |
致谢 | 第68页 |