| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-15页 |
| 1.1 哈密瓜的概况 | 第9-10页 |
| 1.1.1 哈密瓜采后贮藏温度对品质影响的研究 | 第9-10页 |
| 1.1.2 哈密瓜贮藏保鲜 | 第10页 |
| 1.2 转录组与基因表达谱技术的研究 | 第10-12页 |
| 1.2.1 转录组的概况 | 第10-11页 |
| 1.2.2 转录组学研究的技术和方法 | 第11页 |
| 1.2.3 转录组的研究进展 | 第11-12页 |
| 1.3 抗性酶的研究 | 第12-14页 |
| 1.3.1 抗氧化酶在低温胁迫下的研究 | 第12-13页 |
| 1.3.2 几丁质酶的研究 | 第13-14页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第14-15页 |
| 第二章 不同温度对哈密瓜生理生化指标的影响 | 第15-22页 |
| 2.1 实验材料 | 第15页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第15页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第15页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第15页 |
| 2.2 实验方法 | 第15-16页 |
| 2.2.1 样品处理 | 第15-16页 |
| 2.2.2 冷害指数的测定 | 第16页 |
| 2.2.3 失重率的测定 | 第16页 |
| 2.2.4 可溶性固形物含量测定 | 第16页 |
| 2.2.5 硬度的测定 | 第16页 |
| 2.2.6 电导率的测定 | 第16页 |
| 2.2.7 抗性酶的测定 | 第16页 |
| 2.3 结果与分析 | 第16-21页 |
| 2.3.1 温度对哈密瓜果实冷害指数的影响 | 第16-17页 |
| 2.3.2 温度对哈密瓜果实失重率的影响 | 第17-18页 |
| 2.3.3 温度对哈密瓜果实TSS含量的影响 | 第18页 |
| 2.3.4 温度对哈密瓜果实硬度的影响 | 第18-19页 |
| 2.3.5 温度对哈密瓜果实相对电导率的影响 | 第19页 |
| 2.3.6 温度对哈密瓜果实SOD、POD、CAT、CHT活性的影响 | 第19-21页 |
| 2.4 本章小结 | 第21-22页 |
| 第三章 转录组测序及分析 | 第22-33页 |
| 3.1 实验材料 | 第22页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第22页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第22页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第22页 |
| 3.2 实验方法 | 第22-24页 |
| 3.2.1 Total RNA的提取 | 第22-23页 |
| 3.2.2 文库构建及测序 | 第23页 |
| 3.2.3 测序结果评估 | 第23-24页 |
| 3.3 结果与分析 | 第24-32页 |
| 3.3.1 RNA提取及检测分析 | 第24-26页 |
| 3.3.2 测序质量评估 | 第26-30页 |
| 3.3.3 基因分析 | 第30页 |
| 3.3.4 样品相关性分析 | 第30-31页 |
| 3.3.5 条件特异表达基因分析 | 第31-32页 |
| 3.4 本章小结 | 第32-33页 |
| 第四章 冷胁迫下哈密瓜差异表达基因分析 | 第33-47页 |
| 4.1 实验材料 | 第33页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第33页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第33页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第33页 |
| 4.2 实验方法 | 第33-34页 |
| 4.2.1 RNA的提取及测序流程 | 第33页 |
| 4.2.2 差异表达基因的筛选 | 第33页 |
| 4.2.3 GO功能分类 | 第33页 |
| 4.2.4 Pathway显著性富集分析 | 第33-34页 |
| 4.3 结果与分析 | 第34-46页 |
| 4.3.1 差异表达基因及显著差异表达基因分析 | 第34-37页 |
| 4.3.2 差异表达基因的GO功能注释 | 第37-42页 |
| 4.3.3 差异表达基因的Pathway分析 | 第42-43页 |
| 4.3.4 部分抗性酶相关基因分析 | 第43-46页 |
| 4.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第五章 结论与展望 | 第47-49页 |
| 5.1 结论 | 第47页 |
| 5.2 创新点 | 第47-48页 |
| 5.3 展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 作者简介 | 第56-57页 |
| 附录 | 第57-70页 |
| 附件 | 第70页 |