| 学位论文数据集 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第23-47页 |
| 1.1 前言 | 第23-24页 |
| 1.2 化学催化油脂改造技术及产品概述 | 第24-25页 |
| 1.3 生物催化油脂改造技术 | 第25页 |
| 1.4 脂肪酶在油脂改造生产中的应用 | 第25-42页 |
| 1.4.1 脂肪酶简介 | 第27-31页 |
| 1.4.1.1 脂肪酶的选择性 | 第28-30页 |
| 1.4.1.2 脂肪酶的活性中心与催化机理 | 第30-31页 |
| 1.4.1.3 脂肪酶在油脂工业的应用 | 第31页 |
| 1.4.2 脂肪酶催化合成糖基脂肪酸酯 | 第31-35页 |
| 1.4.3 酶催化合成人乳脂肪替代结构酯 | 第35-40页 |
| 1.4.3.1 人乳脂肪替代结构酯概述 | 第35页 |
| 1.4.3.2 母乳脂肪的代谢吸收 | 第35-37页 |
| 1.4.3.3 HMFS的研究进展 | 第37-40页 |
| 1.4.4 环氧化油脂/脂肪酸 | 第40-42页 |
| 1.5 以Candida sp.99-125脂肪酶为核心的绿色催化平台技术 | 第42-43页 |
| 1.6 课题研究思路与内容 | 第43-47页 |
| 第二章 Candida sp.99-125脂肪酶催化合成木糖醇脂肪酸酯 | 第47-73页 |
| 2.1 引言 | 第47页 |
| 2.2 材料与方法 | 第47-50页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第47-48页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第48-50页 |
| 2.2.2.1 溶剂中酶催化合成木糖醇脂肪酸酯体系 | 第48页 |
| 2.2.2.2 无溶剂中酶催化合成木糖醇脂肪酸酯体系 | 第48页 |
| 2.2.2.3 HPLC-ELSD分析 | 第48页 |
| 2.2.2.4 薄层色谱分析 | 第48-49页 |
| 2.2.2.5 硅胶柱色谱分离样品 | 第49页 |
| 2.2.2.6 UPLC-MS分析 | 第49页 |
| 2.2.2.7 NMR产物鉴定 | 第49页 |
| 2.2.2.8 运动粘度测定 | 第49-50页 |
| 2.2.2.9 HLB,CMC值计算 | 第50页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第50-71页 |
| 2.3.1 溶剂体系合成木糖醇脂肪酸酯 | 第50-61页 |
| 2.3.1.1 不同有机溶剂的选择 | 第50-51页 |
| 2.3.1.2 叔丁醇中底物溶解度对反应的影响 | 第51-55页 |
| 2.3.1.3 底物摩尔比对木糖醇脂肪酸酯合成过程的影响 | 第55页 |
| 2.3.1.4 脂肪酶用量对木糖醇脂肪酸酯合成过程的影响 | 第55-56页 |
| 2.3.1.5 反应过程中不同取代木糖醇酯的累积 | 第56-58页 |
| 2.3.1.6 叔丁醇体系中脂肪酶的回用次数 | 第58页 |
| 2.3.1.7 木糖醇脂肪酸酯合成过程中脂肪酶对脂肪酸链长的选择性 | 第58-60页 |
| 2.3.1.8 叔丁醇体系中木糖醇脂肪酸酯合成工艺小结 | 第60-61页 |
| 2.3.2 低温无溶剂体系合成木糖醇癸酸酯 | 第61-71页 |
| 2.3.2.1 脂肪酶用量对木糖醇癸酸酯合成的影响 | 第61-62页 |
| 2.3.2.2 温度对木糖醇癸酸酯合成的影响 | 第62-63页 |
| 2.3.2.3 水添加量对木糖醇癸酸酯合成的影响 | 第63-64页 |
| 2.3.2.4 底物摩尔比及底物分批加入对糖醇癸酸酯合成的影响 | 第64-67页 |
| 2.3.2.5 无溶剂体系中脂肪酶的回用次数 | 第67页 |
| 2.3.2.6 产物分析与过程机理推导 | 第67-70页 |
| 2.3.2.7 木糖醇癸酸酯的性质分析 | 第70-71页 |
| 2.4 本章小结 | 第71-73页 |
| 第三章 Candida sp.99-125脂肪酶无溶剂体系催化合成人乳脂肪替代结构酯 | 第73-109页 |
| 3.1 引言 | 第73页 |
| 3.2 材料与方法 | 第73-77页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第74页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第74-77页 |
| 3.2.2.1 三棕榈酸甘油三酯的合成 | 第74页 |
| 3.2.2.2 无溶剂体系合成人乳脂肪替代结构酯 | 第74页 |
| 3.2.2.3 产品酸价分析 | 第74页 |
| 3.2.2.4 GC-FID分析样品组成 | 第74-75页 |
| 3.2.2.5 甘油三酯中sn-2位组成和总脂肪酸分析 | 第75-77页 |
| 3.2.2.6 油脂样品的过氧化值分析 | 第77页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第77-106页 |
| 3.3.1 棕榈酸甘油三酯合成条件优化 | 第77-80页 |
| 3.3.2 无溶剂体系中酶催化合成HMFS工艺的建立 | 第80-101页 |
| 3.3.2.1 脂肪酶用量对HMFS合成的影响 | 第80-82页 |
| 3.3.2.2 底物摩尔比对HMFS合成的影响 | 第82-85页 |
| 3.3.2.3 外加水含量对HMFS合成的影响 | 第85-89页 |
| 3.3.2.4 温度对HMFS合成的影响 | 第89-92页 |
| 3.3.2.5 HMFS合成过程中的酰基转移反应影响因素及机理探讨 | 第92-101页 |
| 3.3.3 酶催化合成HMFS过程中脂肪酶的回用次数 | 第101页 |
| 3.3.4 HMFS分离精制及中试放大实验 | 第101-104页 |
| 3.3.5 HMFS产品复配与组成分析 | 第104-105页 |
| 3.3.6 工艺成本核算 | 第105-106页 |
| 3.4 本章小结 | 第106-109页 |
| 第四章 Candida sp.99-125脂肪酶催化合成环氧脂肪酸及与化学环氧化过程的对比分析 | 第109-165页 |
| 4.1 引言 | 第109-110页 |
| 4.2 材料与方法 | 第110-115页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第110页 |
| 4.2.2 硫酸甲酸催化油酸环氧化体系 | 第110页 |
| 4.2.3 甲酸催化油酸环氧化体系 | 第110页 |
| 4.2.4 酶催化油酸环氧化体系 | 第110页 |
| 4.2.5 脂肪酶的酶活力测定 | 第110-111页 |
| 4.2.6 酸价分析 | 第111页 |
| 4.2.7 碘值分析 | 第111-112页 |
| 4.2.8 环氧值分析 | 第112-114页 |
| 4.2.9 UPLC-MS分析 | 第114页 |
| 4.2.10 NMR分析 | 第114页 |
| 4.2.11 FT IR分析 | 第114-115页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第115-161页 |
| 4.3.1 无溶剂体系甲酸硫酸催化油酸环氧化体系过程优化 | 第115-130页 |
| 4.3.1.1 搅拌转速的影响 | 第115-116页 |
| 4.3.1.2 温度的影响 | 第116-118页 |
| 4.3.1.3 硫酸用量的影响 | 第118-120页 |
| 4.3.1.4 甲酸硫酸催化油酸环氧化反应产物鉴定 | 第120-122页 |
| 4.3.1.5 甲酸硫酸催化油酸环氧化动力学模型 | 第122-130页 |
| 4.3.2 甲酸催化油酸环氧化反应体系过程优化 | 第130-138页 |
| 4.3.2.1 搅拌转速的影响 | 第130-131页 |
| 4.3.2.2 温度的影响 | 第131-133页 |
| 4.3.2.3 甲酸催化油酸环氧化动力学模型的优化 | 第133-138页 |
| 4.3.3 硫酸对环氧化过程中开环反应的影响 | 第138-140页 |
| 4.3.4 环氧化过程的热力学参数对比 | 第140-144页 |
| 4.3.5 酶催化油酸环氧化体系 | 第144-155页 |
| 4.3.5.1 溶剂或无溶剂反应体系的选择 | 第144-145页 |
| 4.3.5.2 搅拌转速的影响 | 第145-147页 |
| 4.3.5.3 脂肪酶用量的影响 | 第147-151页 |
| 4.3.5.4 酶催化产物鉴定 | 第151-154页 |
| 4.3.5.5 酶催化工艺与文献对比 | 第154-155页 |
| 4.3.6 生物催化及化学催化油酸环氧化过程的比较 | 第155-156页 |
| 4.3.7 酶催化环氧化的应用-无患子油脂肪酸环氧化 | 第156-161页 |
| 4.3.7.1 无患子油脂肪酸成分分析 | 第156-157页 |
| 4.3.7.2 无患子油脂肪酸环氧化的过程优化 | 第157-161页 |
| 4.4 本章小结 | 第161-165页 |
| 第五章 创新点 | 第165-167页 |
| 第六章 结论与建议 | 第167-171页 |
| 6.1 结论 | 第167-169页 |
| 6.2 问题与建议: | 第169-171页 |
| 参考文献 | 第171-181页 |
| 附录 | 第181-187页 |
| 致谢 | 第187-189页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第189-191页 |
| 作者及导师简介 | 第191-193页 |
| 博士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第193-194页 |
