摘要 | 第6-8页 |
abstract | 第8-9页 |
1 前言 | 第10-18页 |
1.1 甘露聚糖简介 | 第10-11页 |
1.2 甘露低聚糖的制备 | 第11-13页 |
1.2.1 超声波降解法 | 第11页 |
1.2.2 辐照改性降解法 | 第11-12页 |
1.2.3 氧化酸化降解法 | 第12页 |
1.2.4 酸酶结合降解法 | 第12页 |
1.2.5 酶降解法 | 第12-13页 |
1.3 MOS的分离纯化 | 第13-14页 |
1.3.1 柱色谱法 | 第13页 |
1.3.2 膜分离法 | 第13页 |
1.3.3 微生物发酵分离法 | 第13-14页 |
1.4 MOS的性质及功能 | 第14-16页 |
1.4.1 改善肠道微生物环境 | 第14页 |
1.4.2 提高机体免疫力 | 第14-15页 |
1.4.3 降血糖血脂作用 | 第15页 |
1.4.4 减肥功效 | 第15-16页 |
1.5 甘露低聚糖在养殖中的应用 | 第16-17页 |
1.5.1 MOS在水产品中的应用 | 第16页 |
1.5.2 MOS在禽畜中的应用 | 第16-17页 |
1.6 本课题的研究目的及内容 | 第17-18页 |
2 材料与方法 | 第18-31页 |
2.1 实验材料 | 第18-21页 |
2.1.1 甘露聚糖 | 第18页 |
2.1.2 β-甘露聚糖酶 | 第18页 |
2.1.3 实验小鼠 | 第18页 |
2.1.4 试剂盒 | 第18页 |
2.1.5 培养基 | 第18-19页 |
2.1.6 主要试剂 | 第19-20页 |
2.1.7 仪器设备 | 第20-21页 |
2.2 实验方法 | 第21-30页 |
2.2.1 β-甘露聚糖酶酶活的测定 | 第21-22页 |
2.2.2 β-甘露聚糖酶酶学特性检测 | 第22-23页 |
2.2.3 DNS法测还原糖 | 第23页 |
2.2.4 苯酚硫酸法测量总糖 | 第23-24页 |
2.2.5 MOS酶法制备工艺优化 | 第24-25页 |
2.2.6 产品质量分析检测 | 第25-27页 |
2.2.7 MOS的体外抑菌作用 | 第27-28页 |
2.2.8 MOS体内实验验证免疫功能 | 第28-30页 |
2.3 数据统计分析 | 第30-31页 |
3 结果与分析 | 第31-49页 |
3.1 β-甘露聚糖酶酶活测定 | 第31-32页 |
3.2 β-甘露聚糖酶酶学特性 | 第32-34页 |
3.2.1 温度对酶活性的影响 | 第32页 |
3.2.2 pH对酶活性的影响 | 第32-33页 |
3.2.3 热稳定性 | 第33页 |
3.2.4 pH稳定性 | 第33-34页 |
3.3 MOS酶法制备工艺的优化 | 第34-38页 |
3.3.1 硫酸-苯酚法测总糖含量 | 第34-35页 |
3.3.2 温度对酶解的影响 | 第35页 |
3.3.3 pH对酶解的影响 | 第35-36页 |
3.3.4 降解时间对酶解的影响 | 第36页 |
3.3.5 酶解条件优化正交试验结果 | 第36-38页 |
3.4 产品质量分析检测结果 | 第38-40页 |
3.4.1 对照相关质量标准进行的检测 | 第38页 |
3.4.2 UV-Vis分析 | 第38-39页 |
3.4.3 FTIR分析 | 第39-40页 |
3.5 MOS对微生物生长的影响 | 第40-43页 |
3.5.1 纯培养时MOS促进约氏乳杆菌的生长 | 第40-41页 |
3.5.2 纯培养时MOS促进致病性大肠杆菌的生长 | 第41页 |
3.5.3 共培养时MOS促进Lac. johnsonii生长、抑制E. coli增殖 | 第41-43页 |
3.6 MOS对小鼠免疫力的影响 | 第43-46页 |
3.6.1 MOS显著提高小鼠脏器比值 | 第43-44页 |
3.6.2 MOS促进吞噬细胞的吞噬功能 | 第44页 |
3.6.3 MOS可提高迟发型超敏反应能力 | 第44-45页 |
3.6.4 MOS对抗体及细胞因子水平的影响 | 第45-46页 |
3.7 MOS对小鼠肠道微生物的影响 | 第46-49页 |
3.7.1 增加肠道微生物的丰度和多样性 | 第46-48页 |
3.7.2 促进肠道有益菌的增殖 | 第48-49页 |
4 小结与讨论 | 第49-52页 |
4.1 小结 | 第49-50页 |
4.2 讨论 | 第50页 |
4.3 展望 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-57页 |
致谢 | 第57页 |