| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩写名词表 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-25页 |
| 1.1 研究问题的由来 | 第11-12页 |
| 1.2 文献综述 | 第12-24页 |
| 1.2.1 植物开花调控 | 第12-20页 |
| 1.2.2 水稻突变体资源及创建 | 第20页 |
| 1.2.3 突变体的分离与克隆 | 第20-23页 |
| 1.2.4 植物泛素化系统 | 第23-24页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第25页 |
| 2.1.2 菌株和载体 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-34页 |
| 2.2.1 水稻材料的种植 | 第26页 |
| 2.2.2 等位性分析 | 第26页 |
| 2.2.3 植物DNA样品的制备（CTAB法） | 第26-27页 |
| 2.2.4 RNA抽提和表达分析 | 第27页 |
| 2.2.5 遗传转化载体的构建与转化 | 第27-28页 |
| 2.2.6 蛋白互作的验证方法 | 第28-30页 |
| 2.2.7 自泛素化和体外泛素化 | 第30页 |
| 2.2.8 体外降解 | 第30页 |
| 2.2.9 烟草体内降解实验 | 第30-31页 |
| 2.2.10 MutMap方法定位水稻抽穗期突变材料 | 第31-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-60页 |
| 3.1 N108、MT、N116、KO材料的遗传分析 | 第34-47页 |
| 3.1.1 突变体的筛选和鉴定 | 第34页 |
| 3.1.2 N108、MT、N116、KO与rid1的等位性检测 | 第34-35页 |
| 3.1.3 F_2定位群体配置及全基因组重测序 | 第35-36页 |
| 3.1.4 N116群体测序数据分析及基因定位 | 第36-41页 |
| 3.1.5 KO群体测序数据分析及基因定位 | 第41-44页 |
| 3.1.6 N108群体测序数据分析及基因定位 | 第44-46页 |
| 3.1.7 MT群体测序数据分析及基因定位 | 第46-47页 |
| 3.2 HAF1泛素化降解HIF1介导抽穗期调控的分子和遗传机制 | 第47-54页 |
| 3.2.1 HAF1与HIF1蛋白在体外和体内互作 | 第47-50页 |
| 3.2.2 HAF1在体外泛素化HIF1蛋白并介导其降解 | 第50-53页 |
| 3.2.3 HAF1在体内介导HIF1蛋白的降解 | 第53-54页 |
| 3.3 HIF1遗传上位于HAF1 | 第54-60页 |
| 3.3.1 ZH11背景下，HIF1转基因材料的遗传效应 | 第54-57页 |
| 3.3.2 在长日照条件下，HIF1遗传上位于HAF1 | 第57-60页 |
| 4 讨论 | 第60-64页 |
| 4.1 全基因组重测序及数据分析 | 第60-61页 |
| 4.2 下一代测序技术的发展加速水稻功能基因组研究 | 第61-62页 |
| 4.3 HAF1与HIF1的互作效应及后续研究 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 附录1 本研究中用到的引物序列表 | 第74-76页 |
| 附录2 个人简介 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
