中文摘要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-12页 |
缩略词 | 第16-17页 |
引言 | 第17-19页 |
第一部分:鞘内注射甘珀酸降低CX43的表达对大鼠镜像痛的影 | 第19-44页 |
引言 | 第19-20页 |
1、材料 | 第20-22页 |
1.1 实验动物 | 第20页 |
1.2 主要仪器 | 第20-21页 |
1.3 手术器械 | 第21页 |
1.4 主要试剂与耗材 | 第21-22页 |
2、试剂配制方法 | 第22-25页 |
3、实验方法 | 第25-32页 |
3.1 实验动物分组 | 第25页 |
3.2 SNI模型的建立及鞘内置管 | 第25-26页 |
3.3 鞘内给药方法 | 第26页 |
3.4 行为学测定 | 第26页 |
3.5 免疫组化染色 | 第26-27页 |
3.6 免疫荧光双标 | 第27-29页 |
3.7 Western Blot | 第29-30页 |
3.7.1 总蛋白的提取 | 第29页 |
3.7.2 蛋白质的含量测定 | 第29-30页 |
3.8 RT-PCR检测基因表达水平 | 第30-32页 |
3.8.1 组织总RNA的提取 | 第30-31页 |
3.8.2 逆转录合成cDNA | 第31页 |
3.8.3 PCR扩增 | 第31-32页 |
3.8.4 PCR产物分析 | 第32页 |
4 数据统计与分析 | 第32-33页 |
结果 | 第33-39页 |
讨论 | 第39-41页 |
结论 | 第41页 |
参考文献 | 第41-44页 |
第二部分:谷氨酸增强缝隙连接通讯功能对星形胶质细胞活化的影响 | 第44-64页 |
引言 | 第44-45页 |
1 实验材料 | 第45-47页 |
1.1 实验动物 | 第45页 |
1.2 主要试剂 | 第45页 |
1.3 主要仪器设备 | 第45-46页 |
1.4 其它实验用品 | 第46-47页 |
2 细胞培养 | 第47-49页 |
2.1 大鼠脊髓星形胶质细胞的原代培养、纯化及分组 | 第47-48页 |
2.2 细胞传代 | 第48页 |
2.3 细胞的冻存 | 第48页 |
2.4 细胞的复苏 | 第48-49页 |
3 实验分组 | 第49页 |
4 实验方法 | 第49-52页 |
4.1 划痕标记染料示踪技术 | 第49-50页 |
4.2 星形胶质细胞p-Cx43,GFAP的免疫荧光染色 | 第50页 |
4.3 蛋白质免疫印迹(Western Blot) | 第50-52页 |
4.3.1 总蛋白的提取 | 第50-51页 |
4.3.2 蛋白质的含量测定 | 第51页 |
4.3.3 电泳和转膜 | 第51-52页 |
5 、数据统计与分析 | 第52-53页 |
结果 | 第53-60页 |
讨论 | 第60-61页 |
结论 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-64页 |
综述 | 第64-82页 |
参考文献 | 第77-82页 |
个人简历 | 第82-83页 |
致谢 | 第83页 |