摘要 | 第2-5页 |
abstract | 第5-8页 |
英文缩写词 | 第9-16页 |
第一章 前言 | 第16-35页 |
研究背景 | 第16页 |
1 鱼类摄食与生长研究进展 | 第16-25页 |
1.1 鱼类摄食行为 | 第16-18页 |
1.2 鱼类摄食调控 | 第18-23页 |
1.2.1 摄食的物理性调节(视觉、机械感受) | 第19页 |
1.2.2 摄食化感调节(嗅觉、味觉) | 第19页 |
1.2.3 摄食中枢和外周调节 | 第19-23页 |
1.3 鱼类生长轴研究进展 | 第23-25页 |
2 鱼类促摄食物质研究进展 | 第25-29页 |
2.1 天然动植物提取物 | 第25-27页 |
2.2 氨基酸类 | 第27-28页 |
2.3 核苷酸类 | 第28页 |
2.4 活性甲基类 | 第28-29页 |
3 鱼类摄食物质的研究方法 | 第29-31页 |
4 促摄食物质调控摄食的作用方式 | 第31-32页 |
研究目的及意义 | 第32-34页 |
主要研究技术路线 | 第34-35页 |
第二章 高植物蛋白饲料中7种促摄食物质的适宜添加量的研究 | 第35-52页 |
1 引言 | 第35-36页 |
2 材料与方法 | 第36-42页 |
2.1 试验饲料 | 第36-40页 |
2.2 试验鱼 | 第40页 |
2.3 饲养试验 | 第40页 |
2.4 数据计算 | 第40-41页 |
2.5 统计分析 | 第41-42页 |
3 结果与分析 | 第42-49页 |
3.1 罗非鱼对混合DMPT饲料的选食偏好 | 第42-43页 |
3.2 罗非鱼对混合DMT饲料的选食偏好 | 第43-44页 |
3.3 罗非鱼对混合Bet饲料的选食偏好 | 第44-45页 |
3.4 罗非鱼对混合Tau饲料的选食偏好 | 第45-46页 |
3.5 罗非鱼对混合Trp饲料的选食偏好 | 第46-47页 |
3.6 罗非鱼对混合Mix-NT饲料的选食偏好 | 第47-48页 |
3.7 罗非鱼对混合SQLP饲料的选食偏好 | 第48-49页 |
4 讨论 | 第49-51页 |
5 小结 | 第51-52页 |
第三章 7种促摄食物质对罗非鱼高植物蛋白饲料营养物质表观消化率的影响 | 第52-62页 |
1 引言 | 第52-53页 |
2 材料和方法 | 第53-57页 |
2.1 试验饲料 | 第53页 |
2.2 试验鱼和饲养管理 | 第53-56页 |
2.2.1 试验鱼及分组 | 第53页 |
2.2.2 饲养管理和粪便收集 | 第53-56页 |
2.3 样品分析 | 第56-57页 |
2.4 消化率计算 | 第57页 |
2.5 统计分析 | 第57页 |
3 结果与分析 | 第57-60页 |
3.1 罗非鱼对8种试验饲料干物质、蛋白质和总能的表观消化率 | 第57-58页 |
3.2 罗非鱼对8种试验饲料氨基酸的表观消化率 | 第58-60页 |
4 讨论 | 第60-61页 |
5 小结 | 第61-62页 |
第四章 7种促摄食物质在高植物蛋白饲料中对吉富罗非鱼摄食、生长性能、血清生化指标、消化酶活性和肠道组织结构的影响 | 第62-82页 |
1 引言 | 第62-63页 |
2 材料和方法 | 第63-69页 |
2.1 试验饲料 | 第63页 |
2.2 试验鱼及饲养管理 | 第63-64页 |
2.3 样品采集与分析 | 第64-69页 |
2.3.1 样品采集 | 第64页 |
2.3.2 营养成分分析 | 第64页 |
2.3.3 消化酶活性分析 | 第64-66页 |
2.3.4 血清生化指标测定 | 第66页 |
2.3.5 石蜡组织切片的制作 | 第66-69页 |
2.4 指标计算 | 第69页 |
2.5 统计分析 | 第69页 |
3 结果与分析 | 第69-76页 |
3.1 8组罗非鱼的摄食量与生长性能 | 第69-72页 |
3.2 8组罗非鱼的血清生化指标 | 第72-74页 |
3.3 8组罗非鱼的全鱼体组成 | 第74-75页 |
3.4 8组罗非鱼的消化酶活性 | 第75-76页 |
3.5 8组罗非鱼的肠道形态学指标 | 第76页 |
4 讨论 | 第76-81页 |
4.1 促摄食物质对罗非鱼摄食量的影响 | 第76-77页 |
4.2 促摄食物质对罗非鱼生长性能的影响 | 第77-79页 |
4.3 促摄食物质对罗非鱼体成分、形态指标和血清生化指标的影响 | 第79-80页 |
4.4 促摄食物质对罗非鱼消化酶活性和肠道形态学指标的影响 | 第80-81页 |
5 小结 | 第81-82页 |
第五章 7种促摄食物质在高植物蛋白饲料中对吉富罗非鱼肌肉品质的影响 | 第82-94页 |
1 引言 | 第82页 |
2 材料和方法 | 第82-85页 |
2.1 试验饲料 | 第82页 |
2.2 试验鱼和饲养管理 | 第82页 |
2.3 样品采集与分析 | 第82-84页 |
2.3.1 肌肉样品采集 | 第82页 |
2.3.2 肌肉氨基酸测定 | 第82页 |
2.3.3 肌肉肌苷酸IMP测定 | 第82-83页 |
2.3.4 肌肉理化性质测定 | 第83页 |
2.3.5 肌肉抗氧化能力的测定 | 第83-84页 |
2.3.6 肌肉中胶原蛋白(羟脯氨酸)含量测定 | 第84页 |
2.4 统计分析 | 第84-85页 |
3 结果与分析 | 第85-91页 |
3.1 8组罗非鱼肌肉的常规营养成分 | 第85-86页 |
3.2 8组罗非鱼肌肉的理化指标 | 第86-87页 |
3.3 8组罗非鱼肌肉的胶原蛋白、肌苷酸含量 | 第87-88页 |
3.4 8组罗非鱼肌肉的抗氧化能力 | 第88-89页 |
3.5 8组罗非鱼肌肉的氨基酸组成 | 第89-91页 |
4 讨论 | 第91-93页 |
4.1 促摄食物质对肌肉常规营养成分和理化指标的影响 | 第91页 |
4.2 促摄食物质对肌肉胶原蛋白和肌苷酸含量的影响 | 第91-92页 |
4.3 促摄食物质对肌肉抗氧化性能的影响 | 第92页 |
4.4 促摄食物质对肌肉氨基酸组成的影响 | 第92-93页 |
5 小结 | 第93-94页 |
第六章 7种促摄食物质在高植物蛋白饲料中对吉富罗非鱼食欲相关基因表达量的影响 | 第94-109页 |
1 引言 | 第94-95页 |
2 材料和方法 | 第95-99页 |
2.1 试验饲料 | 第95页 |
2.2 试验鱼和饲养管理 | 第95页 |
2.3 分子样品采集 | 第95页 |
2.4 食欲相关基因表达量分析 | 第95-98页 |
2.4.1 总RNA提取 | 第95-96页 |
2.4.2 反转录 | 第96-97页 |
2.4.3 实时荧光定量PCR | 第97-98页 |
2.5 统计分析 | 第98-99页 |
3 结果与分析 | 第99-105页 |
3.1 8组罗非鱼脑NPY m RNA相对表达量 | 第99-100页 |
3.2 8组罗非鱼脑Ag RP m RNA相对表达量 | 第100-101页 |
3.3 8组罗非鱼胃Ghrelin m RNA相对表达量 | 第101-102页 |
3.4 8组罗非鱼脑CCK m RNA相对表达量 | 第102-103页 |
3.5 8组罗非鱼胃CCK m RNA相对表达量 | 第103-104页 |
3.6 8组罗非鱼肝胰脏Leptin m RNA相对表达量 | 第104-105页 |
3.7 6种单一促摄食物质组罗非鱼摄食量 | 第105页 |
4 讨论 | 第105-107页 |
5 小结 | 第107-109页 |
第七章 7种促摄食物质在高植物蛋白饲料中对吉富罗非鱼血清GH、IGF-I含量及生长轴相关基因表达量的影响 | 第109-118页 |
1 引言 | 第109页 |
2 材料和方法 | 第109-111页 |
2.1 试验饲料 | 第109页 |
2.2 试验鱼和饲养管理 | 第109页 |
2.3 血清样品和分子样品采集 | 第109-110页 |
2.4 血清样品GH和IGF-I含量检测 | 第110页 |
2.5 生长轴相关基因表达量分析 | 第110-111页 |
2.6 统计分析 | 第111页 |
3 结果与分析 | 第111-116页 |
3.1 8组罗非鱼血清GH和IGF-I含量 | 第111-113页 |
3.2 8组罗非鱼脑GH m RNA相对表达量 | 第113-114页 |
3.3 8组罗非鱼肝胰脏IGF-I m RNA相对表达量 | 第114-115页 |
3.4 8组罗非鱼肝胰脏GHR m RNA相对表达量 | 第115-116页 |
4 讨论 | 第116-117页 |
5 小结 | 第117-118页 |
第八章 全文结论、创新点及有待研究的问题 | 第118-120页 |
致谢 | 第120-122页 |
参考文献 | 第122-140页 |
附录:在读期间发表论文和参加会议情况 | 第140页 |