| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略语表 | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-23页 |
| 1.1 淇河鲫的研究概况 | 第13-15页 |
| 1.1.1 淇河鲫生物学概况 | 第13-14页 |
| 1.1.2 淇河鲫资源保护与养殖现状 | 第14-15页 |
| 1.2 水生动物超氧化物歧化酶研究概况 | 第15-16页 |
| 1.3 水生动物CuZnSOD的研究概况 | 第16-19页 |
| 1.3.1 水生动物CuZnSOD种类和结构特征 | 第16-18页 |
| 1.3.2 CuZnSOD的理化性质 | 第18页 |
| 1.3.3 CuZnSOD生物学功能 | 第18-19页 |
| 1.4 水生动物锰超氧化物歧化酶的研究概况 | 第19-20页 |
| 1.4.1 水生动物MnSOD种类和结构特征 | 第19-20页 |
| 1.4.2 MnSOD的理化性质 | 第20页 |
| 1.4.3 MnSOD生物学功能 | 第20页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第20-21页 |
| 1.6 本研究的特色与创新 | 第21-22页 |
| 1.7 技术路线 | 第22-23页 |
| 第二章 淇河鲫CuZnSOD与MnSOD的基因克隆 | 第23-47页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第23-31页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 总RNA提取 | 第23-24页 |
| 2.1.3 cDNA第一链的合成 | 第24页 |
| 2.1.4 引物设计 | 第24-25页 |
| 2.1.5 中间片段的克隆 | 第25页 |
| 2.1.6 目的片段的回收、连接、转化与测序 | 第25-27页 |
| 2.1.7 3’端扩增 | 第27-29页 |
| 2.1.8 5’端扩增 | 第29-30页 |
| 2.1.9 生物信息学分析 | 第30-31页 |
| 2.2 实验结果 | 第31-42页 |
| 2.2.1 总RNA的提取 | 第31页 |
| 2.2.2 淇河鲫CuZnSOD基因的克隆及序列分析 | 第31-37页 |
| 2.2.3 淇河鲫MnSOD基因的克隆及序列分析 | 第37-42页 |
| 2.3 讨论 | 第42-47页 |
| 第三章 淇河鲫CuZnSOD与MnSOD对嗜水气单胞菌和LPS的响应 | 第47-63页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第47-50页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第47页 |
| 3.1.2 淇河鲫的驯养 | 第47页 |
| 3.1.3 嗜水气单胞菌的侵染实验和LPS | 第47-48页 |
| 3.1.4 表达 | 第48-49页 |
| 3.1.5 酶活性测定 | 第49-50页 |
| 3.2 结果 | 第50-58页 |
| 3.2.1 淇河鲫CuZnSOD和MnSOD的组织表达 | 第50-51页 |
| 3.2.2 嗜水气单胞菌和LPS处理下淇河鲫CuZnSOD和MnSOD的表达变化 | 第51-55页 |
| 3.2.3 嗜水气单胞菌和LPS处理后淇河鲫SOD酶活性变化 | 第55-58页 |
| 3.3 讨论 | 第58-63页 |
| 3.3.1 淇河鲫器官组织中CuZnSOD和MnSOD mRNA表达 | 第58页 |
| 3.3.2 嗜水气单胞菌和LPS处理后淇河鲫CuZnSOD和MnSOD的表达变化 | 第58-59页 |
| 3.3.3 嗜水气单胞菌和LPS处理后淇河鲫SOD酶活的变化 | 第59-63页 |
| 第四章 结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 附录 | 第73-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 攻读学位期间的科研成果 | 第77-78页 |
