| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 缩略词 | 第16-18页 |
| 第1章 绪论 | 第18-36页 |
| 1.1 研究背景与意义 | 第18-19页 |
| 1.2 国内外研究进展 | 第19-36页 |
| 1.2.1 植物形态解剖特征与干旱适应 | 第19-21页 |
| 1.2.2 植物光合作用与干旱适应 | 第21-22页 |
| 1.2.3 干旱与植物的活性氧（ROS）代谢 | 第22-26页 |
| 1.2.4 氧化还原（REDOX）特征物质 | 第26-29页 |
| 1.2.5 氧化还原核心物质谷胱甘肽代谢 | 第29-31页 |
| 1.2.6 氧化还原核心物质抗坏血酸代谢 | 第31-32页 |
| 1.2.7 干旱下植物抗坏血酸和谷胱甘代谢 | 第32-34页 |
| 1.2.8 黄土高原酸枣研究现状 | 第34-36页 |
| 第2章 研究内容与方法 | 第36-51页 |
| 2.1 研究内容 | 第36-37页 |
| 2.1.1 两种源酸枣叶片形态、组织解剖学以及干旱下生长、水分利用分析 | 第36页 |
| 2.1.2 干旱胁迫下两种源地酸枣叶绿素荧光、光合生理分析 | 第36页 |
| 2.1.3 两种源地酸枣干旱下叶片活性氧代谢和抗氧化系统比较分析 | 第36-37页 |
| 2.1.4 两种源地酸枣干旱下氧化还原特征及代谢系统分析比较 | 第37页 |
| 2.1.5 酸枣不同组织部位氧化还原特征、活性氧及抗氧化系统分析比较 | 第37页 |
| 2.1.6 环境氧化或还原状态改变对酸枣悬浮组织细胞代谢的影响 | 第37页 |
| 2.2 研究方法 | 第37-51页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第37-39页 |
| 2.2.2 试验设计 | 第39-41页 |
| 2.2.3 测定项目与方法 | 第41-50页 |
| 2.2.4 数据分析 | 第50-51页 |
| 第3章 两种源地酸枣叶片形态组织解剖学以及干旱下生长和水分利用分析 | 第51-59页 |
| 3.1 叶片形态和解剖 | 第51-54页 |
| 3.2 干旱下生长和水分利用 | 第54-55页 |
| 3.3 讨论与小结 | 第55-59页 |
| 3.3.1 酸枣叶与干旱适应性 | 第56-57页 |
| 3.3.2 生长和水分利用 | 第57-58页 |
| 3.3.3 小结 | 第58-59页 |
| 第4章 干旱胁迫下两种源地酸枣光合生理 | 第59-70页 |
| 4.1 干旱胁迫下光合光响应曲线 | 第60-61页 |
| 4.2 干旱胁迫下蒸腾速率和水分利用率光响应曲线 | 第61-62页 |
| 4.3 干旱胁迫过程中光合生理参数 | 第62-64页 |
| 4.4 干旱胁迫过程中叶绿素荧光参数 | 第64-66页 |
| 4.5 讨论与小结 | 第66-70页 |
| 4.5.1 光合光响应参数与酸枣生态适应性 | 第66-67页 |
| 4.5.2 干旱下酸枣光合参数和叶绿素荧光参数变化与生态适应性 | 第67-68页 |
| 4.5.3 小结 | 第68-70页 |
| 第5章 干旱胁迫下两种源地酸枣活性氧水平和抗氧化酶分析 | 第70-83页 |
| 5.1 活性氧和膜脂过氧化水平 | 第71-72页 |
| 5.2 抗氧化酶水平 | 第72-74页 |
| 5.3 非酶抗氧化剂含量变化 | 第74-76页 |
| 5.4 主成分分析（PCA） | 第76-77页 |
| 5.5 讨论与小结 | 第77-83页 |
| 5.5.1 干旱下ROS水平变化 | 第77-78页 |
| 5.5.2 干旱下抗氧化酶活变化 | 第78-80页 |
| 5.5.3 干旱下非酶抗氧化剂 | 第80-81页 |
| 5.5.4 小结 | 第81-83页 |
| 第6章 干旱下两种源地酸枣氧化还原特征分析比较 | 第83-94页 |
| 6.1 PEG渗透胁迫对两种源酸枣幼苗的生长影响 | 第84-87页 |
| 6.2 PEG渗透胁迫对两种源酸枣幼苗ASC和GSH状态的影响 | 第87页 |
| 6.3 PEG渗透胁迫对两种源酸枣幼苗NAD和NADP状态的影响 | 第87-88页 |
| 6.4 PEG渗透胁迫对两种源酸枣幼苗总巯醇水平影响 | 第88-90页 |
| 6.5 讨论与小结 | 第90-94页 |
| 6.5.1 生长影响 | 第90页 |
| 6.5.2 ASC库影响 | 第90页 |
| 6.5.3 GSH库影响 | 第90-92页 |
| 6.5.4 NAD(P)库影响 | 第92-93页 |
| 6.5.5 小结 | 第93-94页 |
| 第7章 抗坏血酸和谷胱甘肽代谢途径部分关键酶基因片断的克隆 | 第94-106页 |
| 7.1 引物设计与筛选结果 | 第94-95页 |
| 7.2 基因片段的扩增与测序结果 | 第95-96页 |
| 7.3 序列同源比对与进化树分析 | 第96-101页 |
| 7.4 q RT-PCR特异引物设计 | 第101-106页 |
| 第8章 干旱下参与谷胱甘肽-抗坏血酸代谢关键酶活性及基因转录响应的比较 | 第106-117页 |
| 8.1 GSH代谢相关的酶活性 | 第107-108页 |
| 8.2 GSH代谢相关的酶m RNA水平 | 第108-109页 |
| 8.3 ASC代谢相关酶活性 | 第109-110页 |
| 8.4 ASC代谢相关酶m RN A水平 | 第110-112页 |
| 8.5 讨论与小结 | 第112-117页 |
| 8.5.1 ASC-GSH循环途径酶活性与转录水平 | 第112-115页 |
| 8.5.2 ASC和GSH合成途径关键酶活性与转录水平 | 第115-116页 |
| 8.5.3 小结 | 第116-117页 |
| 第9章 酸枣不同组织部位的氧化还原特征、活性氧代谢及抗氧化系统 | 第117-130页 |
| 9.1 酸枣幼苗不同部位活性氧水平 | 第117-118页 |
| 9.2 酸枣幼苗不同部位抗氧化酶活性 | 第118-120页 |
| 9.3 酸枣幼苗不同部位NAD(H) | 第120-121页 |
| 9.4 酸枣幼苗不同部位NADP(H) | 第121-122页 |
| 9.5 酸枣幼苗不同部位ASC和DHA | 第122-123页 |
| 9.6 酸枣幼苗不同部位GSH和GSSG | 第123-124页 |
| 9.7 总的蛋白和非蛋白巯基含量变化 | 第124-125页 |
| 9.8 讨论与小结 | 第125-130页 |
| 9.8.1 ROS水平与组织部位 | 第125-126页 |
| 9.8.2 抗氧化酶与组织部位 | 第126-127页 |
| 9.8.3 氧化还原特征与组织部位 | 第127-128页 |
| 9.8.4 小结 | 第128-130页 |
| 第10章 氧化还原物质对组织细胞代谢的影响 | 第130-137页 |
| 10.1 氧化还原物质对酸枣组织生长的影响 | 第131-132页 |
| 10.2 氧化还原物质对氮代谢相关物质的影响 | 第132-133页 |
| 10.3 氧化还原物质对碳代谢相关物质的影响 | 第133-134页 |
| 10.4 讨论与小结 | 第134-137页 |
| 第11章 主要结论及展望 | 第137-141页 |
| 11.1 主要结论 | 第137-140页 |
| 11.2 展望 | 第140-141页 |
| 参考文献 | 第141-158页 |
| 附录 | 第158-159页 |
| 作者简介 | 第159-160页 |
