摘要 | 第10-12页 |
Abstract | 第12-13页 |
第一章 绪论 | 第14-37页 |
1.1 引言 | 第14页 |
1.2 植物开花诱导途径概述 | 第14-21页 |
1.2.1 光周期途径 | 第14-16页 |
1.2.2 春化途径 | 第16-18页 |
1.2.3 自主途径 | 第18页 |
1.2.4 赤霉素途径 | 第18-19页 |
1.2.5 其它途径及各个途径之间关系 | 第19-21页 |
1.3 水稻花序发育过程概述 | 第21-24页 |
1.4 植物花器官研究进展 | 第24-30页 |
1.5 水稻ABCDE模型及MADS-box基因研究进展 | 第30-34页 |
1.6 水稻粒型相关基因研究进展 | 第34-36页 |
1.7 本研究的目的和意义 | 第36-37页 |
第二章 OsMADS34基因对水稻护颖及产量影响研究 | 第37-64页 |
2.1 实验材料 | 第37-38页 |
2.1.1 长护颖osmads34-t突变体材料来源 | 第37页 |
2.1.2 遗传群体构建及田间种植管理 | 第37页 |
2.1.3 实验涉及试剂与相关仪器设备 | 第37-38页 |
2.1.4 实验中主要载体及菌株 | 第38页 |
2.2 试验方法 | 第38-52页 |
2.2.1 农艺性状调查与遗传分析 | 第38页 |
2.2.2 水稻小穗及颖壳石蜡切片观察 | 第38-40页 |
2.2.3 水稻小穗及颖壳扫描电镜观察 | 第40页 |
2.2.4 水稻叶片DNA提取 | 第40-41页 |
2.2.5 PCR反应体系及凝胶电泳检测 | 第41-42页 |
2.2.6 PCR片段回收 | 第42-43页 |
2.2.7 水稻总RNA提取 | 第43-44页 |
2.2.8 水稻RNA反转录成cDNA及荧光定量PCR | 第44页 |
2.2.9 OsMADS34基因的定位及克隆 | 第44-45页 |
2.2.10 OsMADS34基因相关载体构建 | 第45-47页 |
2.2.11 大肠杆菌质粒提取 | 第47-48页 |
2.2.12 大肠杆菌感受态制备 | 第48-49页 |
2.2.13 农杆菌感受态制备 | 第49页 |
2.2.14 大肠杆菌转化 | 第49页 |
2.2.15 农杆菌转化 | 第49-50页 |
2.2.16 大肠杆菌和农杆菌菌保配置及活化 | 第50页 |
2.2.17 农杆菌介导的水稻愈伤的遗传转化 | 第50-51页 |
2.2.18 水稻原生质体提取及转化 | 第51-52页 |
2.3 结果与分析 | 第52-62页 |
2.3.1 osmads34-t突变体表型 | 第52-53页 |
2.3.2 花器官特异基因表达量分析 | 第53-54页 |
2.3.3 小穗早期发育情况对比分析 | 第54-55页 |
2.3.4 OsMADS34基因对水稻产量的影响 | 第55-57页 |
2.3.5 OsMADS34的遗传分析 | 第57-58页 |
2.3.6 OsMADS34基因定位 | 第58-60页 |
2.3.7 OsM4DS34基因表达分析 | 第60-62页 |
2.4 讨论与结论 | 第62-64页 |
2.4.1 MADS-box基因可能影响水稻产量 | 第62-63页 |
2.4.2 水稻的外稃和水稻护颖具有一定同源性 | 第63-64页 |
第三章 水稻花器官异常基因DF1的功能分析 | 第64-78页 |
3.1 材料与方法 | 第64-66页 |
3.1.1 长颖壳df1突变体材料来源 | 第64页 |
3.1.2 遗传群体构建及田间种植管理 | 第64页 |
3.1.3 实验涉及试剂与相关仪器设备 | 第64页 |
3.1.4 实验中主要载体及菌株 | 第64-66页 |
3.2 结果与分析 | 第66-76页 |
3.2.1 df1突变体花器官表型分析 | 第66-71页 |
3.2.2 DF1基因对籽粒的影响 | 第71-72页 |
3.2.3 小穗早期发育情况对比分析 | 第72-73页 |
3.2.4 DF1基因定位分析 | 第73-74页 |
3.2.5 DF1基因表达模式及亚细胞定位分析 | 第74-76页 |
3.3 讨论与结论 | 第76-78页 |
3.3.1 DF1基因是影响水稻籽粒大小的基因 | 第76页 |
3.3.2 DF1基因控制水稻外稃和内稃发育 | 第76-77页 |
3.3.3 DF1基因是水稻浆片生长必须基因 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-89页 |
附录 | 第89-104页 |
致谢 | 第104-106页 |
攻读学位论文期间发表文章 | 第106-107页 |