| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第14-15页 |
| 第一章 引言 | 第15-21页 |
| 1.1 植物抗肿瘤活性成分 | 第15-16页 |
| 1.1.1 萜类 | 第15页 |
| 1.1.2 生物碱类 | 第15页 |
| 1.1.3 黄酮类 | 第15-16页 |
| 1.1.4 内酯类 | 第16页 |
| 1.1.5 醌类 | 第16页 |
| 1.1.6 多糖类 | 第16页 |
| 1.1.7 其他类 | 第16页 |
| 1.2 抗肿瘤作用机制 | 第16-17页 |
| 1.2.1 抑制肿瘤细胞增殖 | 第16-17页 |
| 1.2.2 诱导肿瘤细胞凋亡 | 第17页 |
| 1.2.3 影响肿瘤基因表达 | 第17页 |
| 1.2.4 其他作用机制 | 第17页 |
| 1.3 烟草西松烷二萜类化合物作为抗肿瘤药物的利用价值研究概况 | 第17-19页 |
| 1.3.1 我国烟草行业发展概况 | 第17-18页 |
| 1.3.2 烟草西松烷二萜类化合物活性的研究 | 第18-19页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第19-20页 |
| 1.5 技术路线 | 第20-21页 |
| 第二章 ?-CBD对肝癌细胞的增殖抑制作用 | 第21-29页 |
| 2.1 试验材料与用品 | 第21-22页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第21页 |
| 2.1.2 试验药品与耗材 | 第21页 |
| 2.1.3 试验仪器 | 第21页 |
| 2.1.4 主要溶液的配方 | 第21-22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-23页 |
| 2.2.1 试验前的准备 | 第22-23页 |
| 2.2.2 肝癌细胞的MTT检测 | 第23页 |
| 2.2.3 肝癌细胞的克隆形成能力检测 | 第23页 |
| 2.2.4 统计学分析 | 第23页 |
| 2.3 结果与分析 | 第23-27页 |
| 2.3.1 HepG2细胞的MTT检测 | 第23-24页 |
| 2.3.2 SMMC-7721 细胞的MTT检测 | 第24-25页 |
| 2.3.3 HL-7702 细胞的MTT检测 | 第25页 |
| 2.3.4 HepG2细胞的细胞克隆形成能力检测 | 第25-26页 |
| 2.3.5 SMMC-7721 细胞的克隆形成能力检测 | 第26-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-29页 |
| 第三章 α-CBD对肝癌细胞的形态学影响 | 第29-34页 |
| 3.1 试验材料与用品 | 第29页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第29页 |
| 3.1.2 试验药品与耗材 | 第29页 |
| 3.1.3 试验仪器 | 第29页 |
| 3.1.4 主要溶液的配方 | 第29页 |
| 3.2 试验方法 | 第29-30页 |
| 3.2.1 试验前的准备 | 第29页 |
| 3.2.2 肝癌细胞的吉姆萨染色 | 第29-30页 |
| 3.2.3 肝癌细胞的AO/EB荧光双染色 | 第30页 |
| 3.2.4 统计学分析 | 第30页 |
| 3.3 结果与分析 | 第30-32页 |
| 3.3.1 HepG2细胞的吉姆萨染色 | 第30-31页 |
| 3.3.2 SMMC-7721 细胞的吉姆萨染色 | 第31页 |
| 3.3.3 HepG2细胞的AO/EB荧光双染色 | 第31-32页 |
| 3.3.4 SMMC-7721 细胞的AO/EB荧光双染色 | 第32页 |
| 3.4 讨论 | 第32-34页 |
| 第四章 α-CBD诱导肝癌细胞周期阻滞和凋亡 | 第34-38页 |
| 4.1 试验材料与用品 | 第34页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第34页 |
| 4.1.2 试验药品与耗材 | 第34页 |
| 4.1.3 试验仪器 | 第34页 |
| 4.1.4 主要溶液的配方 | 第34页 |
| 4.2 试验方法 | 第34-35页 |
| 4.2.1 试验前的准备 | 第34页 |
| 4.2.2 肝癌细胞的周期检测 | 第34-35页 |
| 4.2.3 肝癌细胞凋亡的检测 | 第35页 |
| 4.2.4 统计学分析 | 第35页 |
| 4.3 结果与分析 | 第35-37页 |
| 4.3.1 α-CBD引起肝癌细胞周期阻滞 | 第35-36页 |
| 4.3.2 α-CBD诱导肝癌细胞凋亡率上升 | 第36-37页 |
| 4.4 讨论 | 第37-38页 |
| 第五章 α-CBD对肝癌细胞转录组表达水平影响的研究 | 第38-51页 |
| 5.1 试验材料与用品 | 第38页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第38页 |
| 5.1.2 试验药品与耗材 | 第38页 |
| 5.1.3 试验仪器 | 第38页 |
| 5.1.4 主要溶液的配方 | 第38页 |
| 5.2 试验方法 | 第38-42页 |
| 5.2.1 细胞的处理 | 第38页 |
| 5.2.2 RNA的提取与纯化 | 第38-39页 |
| 5.2.3 cDNA的合成与纯化 | 第39-40页 |
| 5.2.4 体外转录合成生物素标记cRNA | 第40页 |
| 5.2.5 cRNA纯化 | 第40-41页 |
| 5.2.6 cRNA质量检测 | 第41页 |
| 5.2.7 cRNA片段化 | 第41页 |
| 5.2.8 芯片杂交、清洗染色、扫描 | 第41页 |
| 5.2.9 芯片图像的采集、数据提取和分析 | 第41页 |
| 5.2.10 荧光实时定量PCR验证 | 第41-42页 |
| 5.2.11 统计学分析 | 第42页 |
| 5.3 结果与分析 | 第42-50页 |
| 5.3.1 基因表达水平分析 | 第42-44页 |
| 5.3.2 差异表达基因筛选 | 第44-45页 |
| 5.3.3 差异基因聚类分析 | 第45-46页 |
| 5.3.4 差异基因GO富集分析 | 第46-48页 |
| 5.3.5 差异基因KEGG通路富集分析 | 第48-49页 |
| 5.3.6 α-CBD调控凋亡关键基因表达水平改变 | 第49-50页 |
| 5.4 讨论 | 第50-51页 |
| 第六章 全文结论 | 第51-52页 |
| 6.1 结论 | 第51页 |
| 6.1.1 α-CBD抑制肝癌细胞增殖 | 第51页 |
| 6.1.2 α-CBD诱导肝癌细胞周期阻滞 | 第51页 |
| 6.1.3 α-CBD诱导肝癌细胞凋亡 | 第51页 |
| 6.2 创新点 | 第51页 |
| 6.3 研究展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 作者简历 | 第59页 |
