摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
第一章 前言 | 第12-34页 |
1 核酸自组装纳米结构 | 第12-19页 |
1.1 核酸(nucleic acids) | 第12-16页 |
1.1.1 脱氧核糖核酸(DNA) | 第12-14页 |
1.1.1.1 DNA的结构 | 第12-13页 |
1.1.1.2 DNA的分类 | 第13-14页 |
1.1.1.3 DNA的变性与复 | 第14页 |
1.1.2 核糖核酸(RNA) | 第14-16页 |
1.1.2.1 RNA的形成 | 第14-15页 |
1.1.2.2 RNA的分类 | 第15页 |
1.1.2.3 RNA的干扰机制 | 第15-16页 |
1.2 核酸自组装 | 第16-19页 |
1.2.1 核酸自组装的原理 | 第17页 |
1.2.2 核酸自组装纳米结构 | 第17-19页 |
1.2.2.1 DNA纳米管 | 第18页 |
1.2.2.2 DNA纳米折纸 | 第18页 |
1.2.2.3 DNA纳米笼 | 第18页 |
1.2.2.4 DNA纳米立方体 | 第18-19页 |
1.2.3 核酸自组装纳米结构在生物传感以及成像分析中的应用 | 第19页 |
2 生物传感器 | 第19-24页 |
2.1 生物传感器的概述 | 第19页 |
2.2 生物传感器的工作原理 | 第19-20页 |
2.3 生物传感器的分类 | 第20-23页 |
2.3.1 按生物敏感膜分类 | 第21-23页 |
2.3.1.1 酶传感器 | 第21页 |
2.3.1.2 免疫传感器 | 第21-22页 |
2.3.1.3 DNA传感器 | 第22-23页 |
2.3.2 按换能器不同分类 | 第23页 |
2.3.2.1 电化学生物传感器 | 第23页 |
2.3.2.2 光学生物传感器 | 第23页 |
2.3.2.3 热传导生物传感器 | 第23页 |
2.4 生物传感器的应用 | 第23-24页 |
2.4.1 食品分析 | 第23页 |
2.4.2 环境监测 | 第23-24页 |
2.4.3 发酵工业 | 第24页 |
2.4.4 医学领域 | 第24页 |
3 生物成像分析技术 | 第24-27页 |
3.1 光学成像分析技术 | 第25-26页 |
3.1.1 化学发光成像分析技术 | 第25页 |
3.1.2 荧光显微成像分析技术 | 第25-26页 |
3.1.3 活体光学成像分析技术 | 第26页 |
3.2 发光成像材料 | 第26-27页 |
3.2.1 无机材料 | 第26-27页 |
3.2.2 有机材料 | 第27页 |
3.2.3 自发光体 | 第27页 |
3.2.4 磷光物体 | 第27页 |
4 microRNA | 第27-30页 |
4.1 microRNA概述 | 第27-28页 |
4.2 microRNA的生成与结构特点 | 第28-29页 |
4.2.1 microRNA的生成 | 第28页 |
4.2.2 microRNA的结构特点 | 第28-29页 |
4.3 microRNA的功能与应用 | 第29页 |
4.4 microRNA发展前景 | 第29-30页 |
5 生物磁珠与石墨烯 | 第30-32页 |
5.1 生物磁珠 | 第30-31页 |
5.1.1 生物磁珠的应用 | 第30-31页 |
5.1.1.1 酶的固化 | 第30页 |
5.1.1.2 靶向给药 | 第30页 |
5.1.1.3 核酸提取 | 第30页 |
5.1.1.4 其他应用 | 第30-31页 |
5.2 石墨烯 | 第31-32页 |
5.2.1 石墨烯的结构特征 | 第31页 |
5.2.2 石墨烯的功能化 | 第31-32页 |
5.3 功能化石墨烯和生物磁珠的联合应用 | 第32页 |
6 本论文的研究目的和内容 | 第32-34页 |
第二章 核酸自组装纳米球的构建及其用于生物传感及成像分析的应用 | 第34-52页 |
1 引言 | 第34-35页 |
2 实验部分 | 第35-39页 |
2.1 试剂与仪器 | 第35-36页 |
2.1.1 试剂 | 第35-36页 |
2.1.2 仪器装置 | 第36页 |
2.2 实验方法 | 第36-39页 |
2.2.1 细胞培养 | 第36页 |
2.2.2 制备亲和素修饰的酶标板 | 第36-37页 |
2.2.3 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳过程 | 第37页 |
2.2.4 DNA纳米球制备 | 第37-38页 |
2.2.5 溶菌酶的荧光传感实验 | 第38页 |
2.2.6 药载至基于DNA纳米球条码实验 | 第38页 |
2.2.7 荧光共聚焦显微成像 | 第38页 |
2.2.8 化学发光检测 | 第38-39页 |
2.2.8.1 luminol-H_2O_2-HRP-PIP发光体系最适浓度的选择 | 第38页 |
2.2.8.2 实验方法的灵敏性 | 第38-39页 |
2.2.9 原子力成像表征 | 第39页 |
3 结果与讨论 | 第39-51页 |
3.1 实验原理 | 第39-40页 |
3.2 DNA纳米球基本单元的表征 | 第40-42页 |
3.2.1 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳表征 | 第40页 |
3.2.2 原子力显微镜成像表征 | 第40-41页 |
3.2.3 透射电子显微镜和扫描电子显微镜成像表征 | 第41-42页 |
3.3 DNA纳米球的溶菌酶生物传感应用 | 第42-45页 |
3.3.1 实验原理 | 第42-43页 |
3.3.2 灵敏度实验 | 第43-44页 |
3.3.3 选择性实验 | 第44-45页 |
3.4 基于适体的DNA纳米球生物条码的构建 | 第45-47页 |
3.4.1 实验原理 | 第45-46页 |
3.4.2 荧光共聚焦成像表征 | 第46页 |
3.4.3 透射电子显微镜成像表征 | 第46-47页 |
3.5 DNA纳米球的载药和细胞毒性实验 | 第47-50页 |
3.5.1 药物Dox浓度选择 | 第47-48页 |
3.5.2 细胞成像实验 | 第48-50页 |
3.5.2.1 细胞选择性实验 | 第48-49页 |
3.5.2.2 细胞毒性检测 | 第49-50页 |
3.6 DNA纳米球滚环复制产物的化学发光成像检测 | 第50-51页 |
3.6.1 luminol-H_2O_2-HRP-PIP发光体系最适浓度的选择 | 第50-51页 |
3.6.2 实验方法的灵敏性 | 第51页 |
4 小结 | 第51-52页 |
第三章 基于四叉DNA纳米结构和DNA纳米球化学发光共振能量转移成像检测microRNA的研究 | 第52-62页 |
1 引言 | 第52页 |
2 实验部分 | 第52-56页 |
2.1 实际与仪器 | 第52-54页 |
2.1.1 试剂 | 第52-53页 |
2.1.2 仪器装置 | 第53-54页 |
2.2 实验方法 | 第54-56页 |
2.2.1 DNA四叉结构的制备 | 第54页 |
2.2.2 DNA四叉结构的表征 | 第54页 |
2.2.2.1 聚丙烯酰胺凝胶电泳成像表征 | 第54页 |
2.2.2.2 电镜成像表征 | 第54页 |
2.2.3 灵敏度实验 | 第54-55页 |
2.2.3.1 luminol、H_2O_2、hemin最适浓度探究 | 第54页 |
2.2.3.2 待测样品的制备 | 第54-55页 |
2.2.4 对照实验 | 第55页 |
2.2.5 实际样品实验 | 第55页 |
2.2.6 选择性实验 | 第55-56页 |
3 结果与讨论 | 第56-61页 |
3.1 实验原理 | 第56-57页 |
3.2 结构表征 | 第57-59页 |
3.2.1 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳表征 | 第57-58页 |
3.2.2 扫描电子显微镜成像表征 | 第58页 |
3.2.3 透射电子显微镜成像表征 | 第58-59页 |
3.3 灵敏度实验 | 第59-60页 |
3.3.1 luminol-H_2O_2-hemin化学发光体系最适浓度选择 | 第59-60页 |
3.3.2 靶浓度梯度实验 | 第60页 |
3.4 对照实验 | 第60-61页 |
3.5 选择性实验 | 第61页 |
4 小结 | 第61-62页 |
结论 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第69-70页 |