| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-15页 |
| 研究现状、成果 | 第11-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-15页 |
| 1 材料和方法 | 第15-29页 |
| 1.1 材料 | 第15-22页 |
| 1.1.1 HK-2 细胞 | 第15页 |
| 1.1.2 主要实验试剂及其来源 | 第15-16页 |
| 1.1.3 主要抗体及其来源 | 第16页 |
| 1.1.4 主要仪器设备及其来源 | 第16-17页 |
| 1.1.5 主要实验试剂的配制 | 第17-22页 |
| 1.2 实验方法 | 第22-29页 |
| 1.2.1 HK-2 细胞培养 | 第22页 |
| 1.2.2 实验分组及药物刺激 | 第22页 |
| 1.2.3 CCK-8试剂盒检测各组HK-2细胞活性 | 第22-23页 |
| 1.2.4 流式细胞仪检测不同浓度Sch B预处理后的HK-2 凋亡率 | 第23页 |
| 1.2.5 Western Blot检测各组P21、Apaf-1 和Caspase-3 蛋白的表达 | 第23-25页 |
| 1.2.6 逆转录-聚合酶链式反应检测各组HK-2 中Bcl-2 mRNA的表达 | 第25-27页 |
| 1.2.7 免疫荧光染色检测各组细胞P21的表达 | 第27-28页 |
| 1.2.8 统计学方法 | 第28-29页 |
| 2 结果 | 第29-40页 |
| 2.1 不同浓度Sch B预处理后CCK-8 试剂盒检测各组HK-2 活性的结果 | 第29-30页 |
| 2.2 流式细胞仪检测不同浓度Sch B预处理后HK-2 凋亡率的结果 | 第30-31页 |
| 2.3 三种浓度Sch B预处理后对各组HK-2 形态及数目的影响结果 | 第31-34页 |
| 2.4 Western Blot结果 | 第34-37页 |
| 2.5 RT-PCR结果 | 第37-38页 |
| 2.6 免疫荧光结果 | 第38-40页 |
| 3 讨论 | 第40-50页 |
| 3.1 顺铂导致人肾近曲小管上皮细胞凋亡 | 第40页 |
| 3.2 P21在顺铂损伤人肾近曲小管上皮细胞中的作用 | 第40-42页 |
| 3.3 半胱天冬酶-3 在顺铂导致HK-2 凋亡中的作用 | 第42-44页 |
| 3.4 BCL-2 在顺铂导致HK-2 凋亡中的作用 | 第44-46页 |
| 3.5 Apaf-1 在顺铂导致HK-2 凋亡中的作用 | 第46-47页 |
| 3.6 Sch B对顺铂所致HK-2 凋亡的影响 | 第47-50页 |
| 结论 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第59-60页 |
| 综述 顺铂诱导肾损伤及植物衍生物的保护 | 第60-72页 |
| 综述参考文献 | 第66-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 个人简历 | 第73页 |
