摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
1 文献综述 | 第10-17页 |
1.1 石榴采后研究现状 | 第10-11页 |
1.2 花青苷合成及其调控研究进展 | 第11-14页 |
1.2.1 花青苷的结构和种类 | 第11页 |
1.2.2 花青苷的合成途径 | 第11-13页 |
1.2.3 花青苷的稳定性 | 第13-14页 |
1.3 乙烯信号转导研究进展 | 第14-17页 |
1.3.1 乙烯信号转导模型 | 第14-16页 |
1.3.2 乙烯信号转导与果实的衰老和抗逆性 | 第16-17页 |
2 引言 | 第17-19页 |
2.1 研究的目的和意义 | 第17页 |
2.2 研究的内容 | 第17-18页 |
2.3 技术路线 | 第18-19页 |
3 材料与方法 | 第19-24页 |
3.1 试验材料与预处理 | 第19页 |
3.2 试验仪器 | 第19页 |
3.3 主要试剂 | 第19-20页 |
3.4 试验方法 | 第20-24页 |
3.4.1 石榴籽粒品质测定 | 第20页 |
3.4.2 石榴籽粒总RNA的提取及质量检测 | 第20页 |
3.4.3 cDNA的合成及其浓度的测定 | 第20页 |
3.4.4 石榴籽粒花青苷合成和乙烯信号转导相关基因的克隆 | 第20-22页 |
3.4.5 基因的生物信息学分析 | 第22页 |
3.4.6 花青苷合成和乙烯信号转导相关基因的表达分析 | 第22-24页 |
4 结果与分析 | 第24-60页 |
4.1 不同温度处理对采后石榴籽粒品质的影响 | 第24-29页 |
4.1.1 可溶性糖含量变化 | 第24页 |
4.1.2 可滴定酸含量变化 | 第24-25页 |
4.1.3 VC含量变化 | 第25-26页 |
4.1.4 花青苷含量变化 | 第26-27页 |
4.1.5 总酚含量变化 | 第27-28页 |
4.1.6 总黄酮含量变化 | 第28-29页 |
4.2 总RNA的提取及cDNA的检测 | 第29-30页 |
4.2.1 总RNA的提取 | 第29页 |
4.2.2 cDNA检测 | 第29-30页 |
4.3 花青苷合成相关基因的克隆与生物信息学分析 | 第30-42页 |
4.3.1 PgF3'5'H基因的克隆与生物信息学分析 | 第30-34页 |
4.3.2 PgCHI基因的克隆与生物信息学分析 | 第34-38页 |
4.3.3 PgCHS基因的克隆与生物信息学分析 | 第38-42页 |
4.4 乙烯信号转导相关基因的克隆与生物信息学分析 | 第42-53页 |
4.4.1 PgERF1与PgERF2基因的克隆与生物信息学分析 | 第42-49页 |
4.4.2 PgETR基因的克隆与生物信息学分析 | 第49-53页 |
4.5 不同温度处理石榴籽粒基因的表达分析 | 第53-60页 |
4.5.1 PgF3'5'H基因的表达分析 | 第54页 |
4.5.2 PgCHI基因的表达分析 | 第54-55页 |
4.5.3 PgCHS基因的表达分析 | 第55-56页 |
4.5.4 PgERF1基因的表达分析 | 第56-57页 |
4.5.5 PgERF2基因的表达分析 | 第57-58页 |
4.5.6 PgETR基因的表达分析 | 第58-60页 |
5 讨论 | 第60-63页 |
5.1 不同温度处理石榴籽粒品质变化规律 | 第60页 |
5.2 石榴花青苷的合成及其相关基因表达特性 | 第60-61页 |
5.3 乙烯信号转导相关基因及其表达特性 | 第61-63页 |
6 结论 | 第63-65页 |
参考文献 | 第65-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
作者简介 | 第73页 |