| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 1 前言 | 第10-19页 |
| 1.1 附睾的概述 | 第10-12页 |
| 1.1.1 附睾的结构 | 第10-11页 |
| 1.1.2 附睾上皮的结构和功能 | 第11-12页 |
| 1.2 氧化应激与雄性生殖系统 | 第12-13页 |
| 1.3 褪黑激素抗氧化功能的研究进展 | 第13-16页 |
| 1.3.1 褪黑素—常规的抗氧化剂 | 第13页 |
| 1.3.2 褪黑素—调节其它抗氧化酶的活性 | 第13-14页 |
| 1.3.3 褪黑素—螯合重金属盐离子 | 第14-15页 |
| 1.3.4 褪黑素—代谢产物抗氧化 | 第15-16页 |
| 1.3.5 褪黑素—线粒体的靶向抗氧化剂 | 第16页 |
| 1.4 褪黑素受体的概述 | 第16-17页 |
| 1.5 本实验的研究目的和意义 | 第17页 |
| 1.6 技术路线 | 第17-19页 |
| 2 褪黑素受体MT1和MT2在绵羊附睾上的表达 | 第19-28页 |
| 2.1 试验器材 | 第19页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第19页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第19页 |
| 2.2 试验方法 | 第19-23页 |
| 2.2.1 附睾的采集 | 第19-20页 |
| 2.2.2 RNA酶处理 | 第20页 |
| 2.2.3 总RNA提取 | 第20-21页 |
| 2.2.4 反转录合成cDNA | 第21-22页 |
| 2.2.5 实时荧光定量PCR引物设计以及合成 | 第22页 |
| 2.2.6 引物溶解及稀释 | 第22页 |
| 2.2.7 实时荧光定量PCR | 第22-23页 |
| 2.2.8 数据分析 | 第23页 |
| 2.3 试验结果 | 第23-28页 |
| 2.3.1 组织总RNA的电泳检测 | 第23-24页 |
| 2.3.2 MT1、MT2和β-actin基因的RT-qPCR | 第24-25页 |
| 2.3.3 褪黑素受体基因在绵羊附睾的表达 | 第25-28页 |
| 3 褪黑素受体MT1、MT2蛋白在绵羊附睾上的定位 | 第28-34页 |
| 3.1 试验材料和方法 | 第28页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第28页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第28页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第28页 |
| 3.2 试验方法 | 第28-29页 |
| 3.2.1 常规石蜡切片的制作 | 第28-29页 |
| 3.2.2 免疫组化染色 | 第29页 |
| 3.2.3 拍照观察 | 第29页 |
| 3.3 试验结果 | 第29-34页 |
| 3.3.1 褪黑素受体MT1蛋白在绵羊附睾的分布 | 第29-31页 |
| 3.3.2 褪黑素受体MT2蛋白在绵羊附睾的分布 | 第31-34页 |
| 4 讨论 | 第34-37页 |
| 4.1 实时荧光定量PCR试验过程的讨论 | 第34页 |
| 4.2 免疫组化试验方法的讨论 | 第34页 |
| 4.3 褪黑素受体在绵羊附睾的表达与定位 | 第34-37页 |
| 5 结论 | 第37-38页 |
| 6 展望 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 作者简介 | 第45页 |