| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第7-14页 |
| 第一篇 文献综述 | 第14-42页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 第一章 性腺的早期发育及性别决定与分化 | 第15-19页 |
| 1 胚胎性腺的早期发育 | 第15页 |
| 2 胚胎性腺的性别决定与分化 | 第15-17页 |
| 3 卵巢中生殖细胞的减数分裂始动 | 第17-19页 |
| 第二章 原始卵泡的形成及激活 | 第19-35页 |
| 1 原始卵泡的形成概述 | 第19-20页 |
| 2 原始卵泡形成的调控机制 | 第20-24页 |
| ·参与原始卵泡形成的激素、因子 | 第21-22页 |
| ·参与原始卵泡形成的关键基因 | 第22-24页 |
| 3 原始卵泡激活、生长发育的概述 | 第24-26页 |
| 4 原始卵泡激活的调控机制 | 第26-35页 |
| ·参与原始卵泡激活的因子 | 第26-29页 |
| ·参与原始卵泡激活的信号通路 | 第29-35页 |
| 第三章 TGF-β与原始卵泡的激活 | 第35-42页 |
| 1 TGF-β家族的概述 | 第35-37页 |
| ·TGF-β的产生 | 第35页 |
| ·TGF-β的分子结构和基因 | 第35-36页 |
| ·TGF-β受体 | 第36-37页 |
| ·TGF-β的生物学作用 | 第37页 |
| 2 TGF-β家族在卵泡发育中的作用 | 第37-42页 |
| ·生长分化因子-9 | 第38页 |
| ·骨形成蛋白 | 第38-39页 |
| ·抗缪勒氏管激素 | 第39页 |
| ·抑制素和激活素 | 第39-40页 |
| ·转化生长因子-β | 第40-42页 |
| 第二篇 研究论文 | 第42-92页 |
| 第一章 围产期卵巢TGF-β信号通路成员的表达模式 | 第42-50页 |
| 摘要 | 第42页 |
| 1 引言 | 第42-43页 |
| 2 材料与方法 | 第43-46页 |
| ·实验动物 | 第43页 |
| ·主要试剂与溶液 | 第43-45页 |
| ·小鼠性腺分离 | 第45页 |
| ·免疫组织化学 | 第45页 |
| ·免疫蛋白印迹 | 第45-46页 |
| ·统计分析 | 第46页 |
| 3 实验结果 | 第46-48页 |
| ·围产期卵巢中TGF-β信号通路成员的表达定位 | 第46-48页 |
| ·围产期卵巢中TGF-β信号通路成员蛋白水平表达模式 | 第48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 第二章 TGF-β信号通路调控原始卵泡的激活 | 第50-63页 |
| 摘要 | 第50页 |
| 1 引言 | 第50-51页 |
| 2 材料与方法 | 第51-53页 |
| ·实验动物 | 第51页 |
| ·胎鼠性腺的获得 | 第51页 |
| ·主要试剂与溶液配制 | 第51页 |
| ·胚胎卵巢的体外培养 | 第51-52页 |
| ·生殖细胞及卵泡计数 | 第52页 |
| ·Real-time PCR | 第52-53页 |
| ·免疫蛋白印迹 | 第53页 |
| ·RNA干扰 | 第53页 |
| ·统计分析 | 第53页 |
| 3 结果 | 第53-61页 |
| ·TGF-β信号通路对小鼠卵巢原始卵泡库激活的影响 | 第53-57页 |
| ·通过RNA干扰,部分下调TGF-βR1基因的表达促进原始卵泡的生长 | 第57-59页 |
| ·TGF-β1剂量依赖性地逆转SD208所造成的促进原始卵泡生长的现象 | 第59-61页 |
| 4 讨论 | 第61-63页 |
| 第三章 TGF-β信号通路影响小鼠卵巢增殖与凋亡 | 第63-69页 |
| 摘要 | 第63页 |
| 1 引言 | 第63-64页 |
| 2 材料与方法 | 第64-65页 |
| ·实验动物 | 第64页 |
| ·主要试剂与溶液配制 | 第64页 |
| ·胎鼠性腺的获得 | 第64页 |
| ·胚胎卵巢的体外培养 | 第64页 |
| ·细胞增殖检测 | 第64页 |
| ·TUNEL原位凋亡检测 | 第64页 |
| ·免疫蛋白印迹 | 第64-65页 |
| ·统计分析 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-67页 |
| ·TGF-β信号通路对小鼠卵巢增殖的影响 | 第65-66页 |
| ·TGF-β信号通路对小鼠卵巢凋亡的影响 | 第66-67页 |
| 4 讨论 | 第67-69页 |
| 第四章 TGF-β信号通路机制的初步探索 | 第69-81页 |
| 摘要 | 第69页 |
| 1 引言 | 第69-70页 |
| 2 材料与方法 | 第70-72页 |
| ·实验动物 | 第70页 |
| ·主要试剂与溶液配制 | 第70-71页 |
| ·胎鼠性腺的获得 | 第71页 |
| ·胚胎卵巢的体外培养 | 第71页 |
| ·Realtime PCR | 第71页 |
| ·免疫组织化学 | 第71页 |
| ·蛋白质免疫印记 | 第71页 |
| ·统计分析 | 第71-72页 |
| 3 结果 | 第72-79页 |
| ·TGF-p信号通路对GDF9、inhibin a表达的影响 | 第72页 |
| ·TGF-β信号通路对PTEN/P13K、S6K1/rpS6的影响 | 第72-74页 |
| ·TGF-β信号通路对p-rpS6表达水平的影响 | 第74-76页 |
| ·雷帕霉素部分逆转SD208促进原始卵泡生长的作用 | 第76-78页 |
| ·TGF-β调控原始卵泡激活的可能信号通路图 | 第78-79页 |
| 4 讨论 | 第79-81页 |
| 第五章 FOLLISTATIN调控小鼠原始卵泡的形成 | 第81-92页 |
| 摘要 | 第81页 |
| 1 引言 | 第81-82页 |
| 2 材料与方法 | 第82-83页 |
| ·实验动物 | 第82页 |
| ·主要试剂与溶液配制 | 第82页 |
| ·胎鼠性腺的获得 | 第82页 |
| ·胚胎卵巢的体外培养 | 第82页 |
| ·免疫组织化学 | 第82-83页 |
| ·免疫蛋白印迹 | 第83页 |
| ·细胞增殖检测 | 第83页 |
| ·TUNEL原位凋亡检测 | 第83页 |
| ·统计分析 | 第83页 |
| 3 结果 | 第83-90页 |
| ·Follistatin蛋白在围产期小鼠卵巢的表达 | 第83-84页 |
| ·Follistatin蛋白在围产期小鼠卵巢表达水平的变化 | 第84-85页 |
| ·FST288抑制原始卵泡的形成 | 第85-87页 |
| ·FST288抑制体细胞的增殖 | 第87-88页 |
| ·FST288对卵巢细胞凋亡的影响 | 第88-89页 |
| ·FST288对Notch信号通路的影响 | 第89-90页 |
| 4 讨论 | 第90-92页 |
| 结论 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-105页 |
| 附表 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106-109页 |
| 个人简历 | 第109-110页 |
| 博士期间已发表的文章 | 第110页 |
