| 摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 英文缩写说明 | 第13-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-26页 |
| ·POKEMON基因简介 | 第14-15页 |
| ·AP-2基因概述 | 第15-17页 |
| ·SURVIVIN简介 | 第17-18页 |
| ·细胞凋亡 | 第18-19页 |
| ·研究转录因子相互作用的方法 | 第19-23页 |
| ·芯片分析 | 第19-20页 |
| ·免疫共沉淀 | 第20-21页 |
| ·GST-pull down | 第21页 |
| ·荧光共定位 | 第21-22页 |
| ·酵母双杂交 | 第22-23页 |
| ·转录因子调节靶基因的研究思路与方法 | 第23-24页 |
| ·启动子活性分析 | 第23页 |
| ·染色质免疫共沉淀 | 第23-24页 |
| ·转录因子结合位点分析 | 第24页 |
| ·基因表达水平检测 | 第24页 |
| ·课题的创新点 | 第24页 |
| ·硕士论文的主要内容 | 第24-26页 |
| ·AP-2α和pokemon相互作用关系的发现和证明 | 第24-25页 |
| ·AP-2α表达质粒的构建及与pokemon的互作对survivin启动子活性影响 | 第25页 |
| ·AP-2α在survivin启动子结合的验证及位点分析 | 第25页 |
| ·AP-2α对survivin表达的调节作用及对细胞行为的影响 | 第25-26页 |
| 第二章 AP-2A和POKEMON相互作用关系的发现和证明 | 第26-38页 |
| ·引言 | 第26页 |
| ·材料与方法 | 第26-32页 |
| ·细胞 | 第26页 |
| ·菌种 | 第26页 |
| ·质粒载体 | 第26页 |
| ·主要试剂 | 第26-27页 |
| ·主要溶液配制 | 第27-28页 |
| ·仪器 | 第28-29页 |
| ·方法 | 第29-32页 |
| ·实验结果 | 第32-37页 |
| ·与Pokemon相互作用的转录因子的研究 | 第32-35页 |
| ·免疫共沉淀实验对OATFA的验证 | 第35页 |
| ·GST pull down实验对Pokemon和AP-2α相互作用的验证 | 第35-36页 |
| ·Pokemon和AP-2α在细胞内的荧光共定位 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-38页 |
| 第三章 POKEMON和AP-2A相互作用对下游基因SURVIVIN的影响及AP-2A对SURVIVIN调控的机理研究 | 第38-56页 |
| ·引言 | 第38页 |
| ·材料与方法 | 第38-49页 |
| ·主要试剂 | 第38-39页 |
| ·溶液配制 | 第39-40页 |
| ·主要仪器 | 第40页 |
| ·研究方法 | 第40-49页 |
| ·实验结果 | 第49-54页 |
| ·AP-2α表达质粒构建 | 第49页 |
| ·AP-2α和pokemon表达质粒对survivin启动子活性的影响 | 第49-52页 |
| ·AP-2α直接结合于survivin启动子而影响其活性 | 第52-53页 |
| ·survivin启动子上可能的AP-2α位点的突变及突变后启动子活性分析 | 第53-54页 |
| ·AP-2α影响survivin的mRNA水平 | 第54页 |
| ·讨论 | 第54-56页 |
| 第四章 AP-2A的表达变化对细胞药物敏感性的影响 | 第56-60页 |
| ·引言 | 第56页 |
| ·材料与方法 | 第56-57页 |
| ·主要试剂 | 第56页 |
| ·溶液配制 | 第56页 |
| ·主要仪器 | 第56-57页 |
| ·研究方法 | 第57页 |
| ·实验结果 | 第57-59页 |
| ·AP-2α表达质粒增加MCF-7细胞的药物敏感性 | 第57-58页 |
| ·AP-2α siRNA降低了293T细胞的药物敏感性 | 第58-59页 |
| ·讨论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 发表文章目录 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
