| 中文摘要 | 第1-14页 |
| 英文摘要 | 第14-19页 |
| 符号说明 | 第19-23页 |
| 第一章 前言 | 第23-26页 |
| 第二章 实验材料 | 第26-27页 |
| 第三章 实验方法 | 第27-45页 |
| ·体外实验 | 第27-41页 |
| ·细胞培养 | 第27-28页 |
| ·基因沉默—小干扰RNA技术 | 第28-29页 |
| ·质粒扩增和抽提 | 第29-31页 |
| ·建立稳定转染细胞系 | 第31-32页 |
| ·用放射性碘125标记的白蛋白检测白蛋白的内吞 | 第32-33页 |
| ·用放射性碘125标记的白蛋白检测白蛋白的跨细胞转运 | 第33-34页 |
| ·用免疫荧光标记的白蛋白检测白蛋白的内吞 | 第34页 |
| ·跨内皮细胞电阻检测内皮屏障功能 | 第34-35页 |
| ·免疫印迹分析法 | 第35-38页 |
| ·免疫沉淀纯化蛋白、免疫共沉淀法检测蛋白之间相互作用 | 第38-39页 |
| ·免疫荧光双染色 | 第39-40页 |
| ·分离细胞质和细胞膜 | 第40-41页 |
| ·整体动物实验 | 第41-44页 |
| ·新鲜脂质体的制备 | 第41-42页 |
| ·脂质体介导的小鼠基因转染 | 第42页 |
| ·小鼠原位离体肺灌流模型 | 第42-43页 |
| ·计算白蛋白通透性肺表面积乘积定量评价肺血管通透性 | 第43页 |
| ·肺湿/干比重检测肺水肿 | 第43-44页 |
| ·小鼠肺组织总蛋白的抽提和蛋白浓度的测定 | 第44页 |
| ·统计分析 | 第44-45页 |
| 第四章 结果与分析 | 第45-53页 |
| ·H_2O_2通过Src和c-Ab1激酶诱导Cav-1的酪氨酸磷酸化 | 第45-46页 |
| ·Cav-1的磷酸化介导H_2O_2诱导的白蛋白跨细胞通透性增加 | 第46-48页 |
| ·Cav-1的磷酸化介导H_2O_2诱导的白蛋白细胞旁通透性增加 | 第48-49页 |
| ·Cav-1的磷酸化介导H202诱导的β-catenin和VE-cadherin复合体分离 | 第49-51页 |
| ·Cav-1的磷酸化介导H202诱导的肺血管通透性增高和肺水肿 | 第51-52页 |
| ·模型 | 第52-53页 |
| 第五章 讨论 | 第53-57页 |
| 第六章 结论 | 第57-58页 |
| 第七章 附图表 | 第58-95页 |
| 英文论文 | 第95-128页 |
| 参考文献 | 第128-134页 |
| 文献综述 | 第134-153页 |
| Ⅰ 活性氧对血管内皮细胞通透性的影响 | 第134-144页 |
| Ⅱ Caveolae、Caveolin-1在调节血管内皮细胞通透性中的作用及机制 | 第144-153页 |
| 致谢 | 第153-154页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文目录 | 第154-155页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第155页 |
