| 论文正文：河南食管癌高发区食管癌前病变和癌组织MGMT,XPC,POLB和P53变化特征 | 第1-96页 |
| Ⅰ 论文第一部分 河南食管癌高发区食管癌前病变和癌组织MGMT,XPC,POLB和P53表达改变 | 第20-55页 |
| Ⅰ.1 引言 | 第20-25页 |
| Ⅰ.2 材料与方法 | 第25-36页 |
| Ⅰ.2.1 研究对象 | 第25页 |
| Ⅰ.2.2 标本处理 | 第25页 |
| Ⅰ.2.3 组织病理学诊断 | 第25-26页 |
| Ⅰ.2.4 组织总RNA、基因组DNA和蛋白质提取 | 第26-29页 |
| Ⅰ.2.5 免疫组织化学检测MGMT,XPC,POLβ和p53蛋白表达 | 第29-30页 |
| Ⅰ.2.6 Western-blot检测MGMT,XPC,POLβ和p53蛋白表达 | 第30-32页 |
| Ⅰ.2.7 RT-PCR检测MGMT,XPC和POLβ基因mRNA表达 | 第32-34页 |
| Ⅰ.2.8 统计学分析 | 第34-35页 |
| Ⅰ.2.9 主要仪器 | 第35页 |
| Ⅰ.2.10 主要试剂 | 第35-36页 |
| Ⅰ.3 结果 | 第36-42页 |
| Ⅰ.3.1 病理诊断 | 第36-37页 |
| Ⅰ.3.2 免疫组化检测MGMT,XPC,POLβ和P53蛋白表达 | 第37-38页 |
| Ⅰ.3.3 Western-blot检测MGMT,XPC,POLβ,P53蛋白表达 | 第38页 |
| Ⅰ.3.4 RT-PCR检测MGMT,XPC,POLβmRNA表达 | 第38-39页 |
| Ⅰ.3.5 三种不同方法检测MGMT,XPC,POLβ和P53表达比较 | 第39-40页 |
| Ⅰ.3.6 MGMT阴性表达与POLβ、P53阳性表达相关性 | 第40-41页 |
| Ⅰ.3.7 XPC阴性表达与POLβ、P53阳性表达相关性 | 第41-42页 |
| Ⅰ.3.8 MGMT阴性表达与XPC阴性表达相关性 | 第42页 |
| Ⅰ.3.9 P53阳性表达与POLβ阳性表达相关性 | 第42页 |
| Ⅰ.4 讨论 | 第42-55页 |
| Ⅰ.4.1 MGMT阴性表达 | 第42-44页 |
| Ⅰ.4.2 XPC阴性表达 | 第44-47页 |
| Ⅰ.4.3 POLβ阳性表达 | 第47-48页 |
| Ⅰ.4.4 P53阳性表达 | 第48-50页 |
| Ⅰ.4.5 MGMT阴性表达与POLβ、p53阳性表达相关性 | 第50-51页 |
| Ⅰ.4.6 XPC阴性表达与MGMT阴性表达、POLβ和p53阳性表达相关性 | 第51-53页 |
| Ⅰ.4.7 P53与POLβ阳性表达相关性 | 第53页 |
| Ⅰ.4.8 三种不同方法检测基因表达比较 | 第53-55页 |
| Ⅱ 论文第二部分 河南食管癌高发区食管癌前病变和癌组织MGMT和P53变化特征 | 第55-96页 |
| Ⅱ.1 引言 | 第55-57页 |
| Ⅱ.2 材料与方法 | 第57-65页 |
| Ⅱ.2.1 研究对象： | 第57页 |
| Ⅱ.2.2 标本处理 | 第57页 |
| Ⅱ.2.3 组织病理学诊断 | 第57页 |
| Ⅱ.2.4 组织总RNA、基因组DNA和蛋白质提取 | 第57页 |
| Ⅱ.2.5 DHPLC检测基因突变和缺失 | 第57-60页 |
| Ⅱ.2.6 MSP检测MGMT基因启动子区甲基化 | 第60-64页 |
| Ⅱ.2.7 DHPLC检测MGMT基因启动子区甲基化 | 第64页 |
| Ⅱ.2.8 统计学分析 | 第64-65页 |
| Ⅱ.3 结果 | 第65-73页 |
| Ⅱ.3.1 病理诊断 | 第65页 |
| Ⅱ.3.2 MGMT基因启动子区甲基化检测 | 第65-66页 |
| Ⅱ.3.3 MSP和DHPLC检测MGMT甲基化比较 | 第66页 |
| Ⅱ.3.4 P53突变检测 | 第66-72页 |
| Ⅱ.3.5 MGMT基因启动子区甲基化和P53突变关系 | 第72页 |
| Ⅱ.3.6 MGMT基因3、5外显子突变 | 第72-73页 |
| Ⅱ.4 讨论 | 第73-81页 |
| Ⅱ.4.1 MGMT基因启动子区甲基化及第3、5外显子突变 | 第73-74页 |
| Ⅱ.4.2 p53突变 | 第74-75页 |
| Ⅱ.4.3 MGMT和p53基因改变关系 | 第75-76页 |
| Ⅱ.4.4 DHPLC技术特征分析 | 第76-79页 |
| Ⅱ.4.5 DHPLC敏感性和特异性 | 第79-80页 |
| Ⅱ.4.6 MSP检测甲基化 | 第80页 |
| Ⅱ.4.7 DHPLC检测甲基化 | 第80-81页 |
| Ⅱ.4.8 DHPLC与MSP检测甲基化比较 | 第81页 |
| Ⅱ.5 结论 | 第81-82页 |
| Ⅱ.6 创新点 | 第82页 |
| Ⅱ.7 参考文献 | 第82-94页 |
| Ⅱ.8 附图 | 第94-96页 |
| 后记1：综述 | 第96-110页 |
| Ⅲ 综述 DHPLC技术及其在肿瘤分子生物学研究中的应用 | 第96-110页 |
| Ⅲ.1 引言 | 第96-97页 |
| Ⅲ.2 DHPLC基本工作原理 | 第97-98页 |
| Ⅲ.3 DHPLC检测样品要求 | 第98-99页 |
| Ⅲ.3.1 PCR反应体系 | 第99页 |
| Ⅲ.3.2 杂合双链形成 | 第99页 |
| Ⅲ.4 工作温度理论预测 | 第99-100页 |
| Ⅲ.5 DHPLC敏感性和特异性 | 第100-101页 |
| Ⅲ.6 DHPLC数据解释 | 第101-102页 |
| Ⅲ.6.1 典型DHPLC色谱图 | 第101页 |
| Ⅲ.6.2 变异识别 | 第101-102页 |
| Ⅲ.7 DHPLC实际应用 | 第102-105页 |
| Ⅲ.7.1 微卫星分析 | 第102页 |
| Ⅲ.7.2 定量RT-PCR | 第102-103页 |
| Ⅲ.7.3 DNA片段长度分析 | 第103页 |
| Ⅲ.7.4 SNP发现和确定 | 第103-104页 |
| Ⅲ.7.5 突变检测 | 第104页 |
| Ⅲ.7.6 DNA甲基化检测 | 第104-105页 |
| Ⅲ.7.7 引物延伸法 | 第105页 |
| Ⅲ.7.8 寡核苷酸的纯化 | 第105页 |
| Ⅲ.8 DHPLC应用前景和展望 | 第105-106页 |
| Ⅲ.9 参考文献 | 第106-110页 |
| 后记2：REVIEW | 第110-136页 |
| Ⅳ REVIEW DNA METHYLATION AND ESOPHAGEAL SOUAMOUS CELL CANCER:SPECIAL REFERENCE TO RESEARCH IN CHINA | 第110-136页 |
| Ⅳ.1 INTRODUCTION | 第111-113页 |
| Ⅳ.2 STUDIES OF GENES PROMOTER HYPERMETHYLATION IN SCC | 第113-120页 |
| Ⅳ.2.1 p14 ARF,p15,and p16 | 第114-115页 |
| Ⅳ.2.2 The FHIT gene | 第115页 |
| Ⅳ.2.3 The RARβ2 gene | 第115-117页 |
| Ⅳ.2.4 The APC gene | 第117页 |
| Ⅳ.2.5 The MGMT Rene | 第117页 |
| Ⅳ.2.6 The E-cadherin gene | 第117-118页 |
| Ⅳ.2.7 The TSLC1 gene | 第118-119页 |
| Ⅳ.2.8 The RASSF1A gene | 第119-120页 |
| Ⅳ.3 METHYLATION IN SERUM FROM THE ESOPHAGEAL CANCER PATIENTS | 第120-121页 |
| Ⅳ.4 ABERRANT DNA METHYLATION IS AN EARLY EVENT IN ESOPHAGEAL CARCINOGENESIS | 第121-122页 |
| Ⅳ.5 HYPERMETHYLATION AS A TARGET OF THERAPEUTIC INTERVENTION | 第122页 |
| Ⅳ.6 SIGNIFICANCE OF METHYLATION IN CLINICAL APPLICATION | 第122-123页 |
| Ⅳ.7 CONCLUSION AND PERSPECTIVES | 第123-124页 |
| Ⅳ.8 REFERENCES | 第124-136页 |
| Ⅴ 中英文缩略词 | 第136-137页 |
| Ⅵ 附录 | 第137-140页 |
| Ⅶ 致谢 | 第140页 |
